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  南方医科大学学报  2020, Vol. 40Issue (4): 580-585  DOI: 10.12122/j.issn.1673-4254.2020.04.21.
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汤凯淇, 张瑜, 陈丽竹, 屈直. 和厚朴酚对人舌癌CAL-27细胞增殖、迁移及凋亡的影响[J]. 南方医科大学学报, 2020, 40(4): 580-585. DOI: 10.12122/j.issn.1673-4254.2020.04.21.
TANG Kaiqi, ZHANG Yu, CHEN Lizhu, QU Zhi. Effect of honokiol on proliferation, migration and apoptosis of human tongue cancer CAL-27 cells in vitro[J]. Journal of Southern Medical University, 2020, 40(4): 580-585. DOI: 10.12122/j.issn.1673-4254.2020.04.21.

基金项目

辽宁省科学技术计划项目(2018225031)

作者简介

汤凯淇,硕士研究生,E-mail: 329405591@qq.com

通信作者

屈直,教授,硕士导师,E-mail: quzhi7777@sina.com

文章历史

收稿日期:2019-10-31
和厚朴酚对人舌癌CAL-27细胞增殖、迁移及凋亡的影响
汤凯淇 , 张瑜 , 陈丽竹 , 屈直     
锦州医科大学附属第二医院修复科,辽宁 锦州 121004
摘要: 目的 探讨和厚朴酚(HNK)对人舌鳞癌CAL-27细胞增殖、迁移和凋亡的影响。方法 采用含10%胎牛血清的DMEM培养基培养CAL-27细胞。并将其分为对照组和3个实验组,实验组分别加入20、40、60 μmol/L的HNK进行处理。用MTT法检测不同浓度和厚朴酚对CAL-27细胞增殖的影响;划痕实验观察CAL-27细胞迁移能力;Hoechst33342荧光染色法和Annexin VFITC/PI法检测CAL-27细胞凋亡数及凋亡率;Western blot检测CAL-27细胞内p-Pi3k、p-Fak、Fak、MMP2、MMP9、p-Akt、Akt、Bax、Bcl-2和Cleaved-Caspase-3的蛋白表达量。结果 HNK(0、20、40、60 μmol/L)处理24 h后CAL-27细胞增殖、迁移能力减弱;且随HNK浓度增大细胞凋亡数升高,凋亡率分别为(6.53±1.80)%、(15.24±2.06)%、(35.03±2.42)%、(48.13±4.61)%,细胞内p-Pi3k、p-Fak、p-Akt、MMP2、MMP9和Bcl-2蛋白表达量减少而Bax、Cleaved-Caspase-3蛋白表达量增加(P < 0.01)。结论 HNK能抑制CAL-27细胞体外增殖及迁移,同时还能诱导其凋亡,作用机制可能与调控细胞内p-Pi3k、p-Fak、p-Akt、MMP2、MMP9、Bax、Bcl-2和Cleaved-Caspase-3的蛋白表达量有关。
关键词: 和厚朴酚    CAL-27细胞    增殖    迁移    凋亡    
Effect of honokiol on proliferation, migration and apoptosis of human tongue cancer CAL-27 cells in vitro
TANG Kaiqi , ZHANG Yu , CHEN Lizhu , QU Zhi     
Department of Prosthetics, Second Affiliated Hospital of Jinzhou Medical University, Jinzhou 121004, China
Abstract: Objective To study the effects of honokiol on proliferation, migration and apoptosis of human tongue carcinoma CAL-27 cells. Methods Routinely cultured CAL-27 cells were treated with 20, 40, or 60 μmol/L honokiol and the changes in cell proliferation were assessed with MTT assay. The scratch wound healing assay was used to assess the migration ability of the treated cells, and the cell apoptosis was detected with Hoechst33342 fluorescence staining and annexin V-FITC/PI method. The protein expression levels of p-Pi3k, p-Fak, Fak, MMP-2, MMP-9, p-Akt, Akt, Bax, Bcl-2 and cleaved-caspase-3 in the treated cells were detected using Western blotting. Results Treatment with honokiol at 20, 40, and 60 μmol/L for 24 h significantly lowered the proliferation and migration ability of CAL-27 cells. The number of apoptotic cells increased with the increase of honokiol concentration, which resulted in a cell apoptosis rate of (15.24±2.06)% at 20 μmol/L, (35.03±2.42)% at 40 μmol/L, and (48.13±4.61)% at 60 μmol/L, as compared with (6.53±1.80)% in the control group. The expressions of p-Pi3k, p-Fak, MMP-2, MMP-9, p-Akt and BCL-2 decreased and those of Bax and cleaved-caspase-3 increased significantly in the cells after the treatment (P < 0.01). Conclusion Honokiol can inhibit the proliferation and migration and induce apoptosis of CAL-27 cells in vitro possibly by regulating the expressions of p-Pi3k, p-Fak, MMP-2, MMP-9, p-Akt, Bax, Bcl-2 and cleaved-caspase-3.
Keywords: honokiol    CAL-27 cells    proliferation    migration    apoptosis    

在我国,口腔癌是人类癌症疾病中最高发的肿瘤之一,舌癌又作为口腔癌中恶性程度最高的癌症性疾病之一[1-2]。近几十年来,舌癌的治疗大多运用手术、放疗等手段,但术后复发率高且毒副作用大[3-4]。所以寻找适合的药物治疗舌癌已成为科研界密切关注的问题。

和厚朴酚(HNK)是在中药厚朴中提取出的双酚类成分,其生物学活性和药理作用包括抗肿瘤、抗氧化、消炎等[5-7]。已有研究表明和厚朴酚可抑制结肠癌、鼻咽癌等癌细胞的生长,且曲莉等研究发现HNK可通过Pi3k/ Akt信号通路影响肿瘤细胞的增殖、侵袭和转移,但具体作用机制尚不明确[8-9]。目前尚未有人在舌癌细胞中研究和厚朴酚所起的作用,因此,本文将研究HNK体外对人舌鳞癌CAL-27细胞的影响及作用机制。

1 材料和方法 1.1 材料

细胞:人舌鳞癌CAL-27细胞系购自中国科学院上海细胞库。

药品与试剂:HNK,纯度:>98%(批号:JZ15031502,南京景竹生物科技有限公司);噻唑蓝试剂盒(碧云天)。

仪器:酶标仪(Bio TeK);倒置荧光显微镜(Olympus);蛋白印迹系统(Bio-RAD)。

1.2 细胞培养

人舌鳞癌CAL-27细胞用含10%血清、100 kU/L-1青霉素及100 μg/mL链霉素DMEM培养基,并放在含5% CO2、37 ℃的恒温箱内培养,待细胞长至皿底85%左右时进行常规传代或后续细胞实验。

1.3 分组与处置

将CAL-27细胞分成4组:对照组细胞不加和厚朴酚。实验组细胞分别加入低、中、高浓度(20、40、60μmol/L)的HNK处理。

HNK配置方法:先用二甲基亚砜(DMSO)溶解至100 mmol/L,再用无血清培养基稀释到20、40、60 μmol/L。

1.3.1 MTT法检测细胞增殖抑制率

细胞分组及处理同1.3,约5000/孔的浓度的CAL-27细胞接种至96孔板,贴壁后加入和厚朴酚培养液,24 h后加入10 μL MTT溶液且继续培养4 h,吸掉培养液并加入150 μL的DMSO,检测酶标仪490 nm处的吸光度值(A490 nm)。

生长抑制率(%)=(A对照组-A实验组)/A对照组×100%。

1.3.2 划痕实验观察细胞迁移能力

细胞分组及处理同1.3,约5×105/孔的浓度的CAL-27细胞接种至6孔板,细胞均匀长满后用200 μL枪头进行均匀划痕,磷酸盐缓冲液(PBS)洗去划落的细胞,加入HNK培养液,24 h后用显微镜观察并拍照记录。

1.3.3 Hoechst33342染色法观察细胞凋亡形态

细胞分组及处理同1.3,约1×105/孔的浓度的CAL-27细胞接种至6孔板,贴壁后加入HNK培养液,24 h后吸掉培养液,用PBS清洗3次后加入Hoechst33342染色剂且继续孵育30 min,吸掉液体后再用PBS清洗3次,荧光显微镜观察并记录。

1.3.4 流式细胞术检测细胞凋亡

细胞分组及处理同1.3,约1×105/孔的浓度的CAL-27细胞接种至6孔板,贴壁后加入HNK培养液,24 h后用不含乙二胺四乙酸(EDTA)胰酶消化细胞,离心并用流式缓冲液吹散细胞,再加入5 μL Annexin V-FITC和10 μL PI后避光室温处理15 min,流式细胞仪检测并记录。

1.3.5 免疫印迹法检测相关蛋白表达

细胞分组及处理同1.3,约3×106/皿的浓度的CAL-27细胞接种至大皿(直径为10 cm),经HNK处理24 h后,用细胞刮刀收集各组细胞并提取总蛋白,定量、制样及制胶后进行电泳、转膜及封闭,孵育一抗和二抗后用化学发光试剂(ECL)显影并记录。

1.4 统计学处理

SPSS21.0软件进行统计学分析,用均数±标准差表示,两组间比较使用t检验,多组间比较用使单因素方差分析,P < 0.05为差异有统计学意义。

2 结果 2.1 HNK对CAL-27细胞的增殖抑制作用

与对照组相比,经不同浓度HNK处理CAL-27细胞24 h后,细胞增殖能力均明显受到抑制,且随HNK浓度增加受到抑制的效果更加显著(P < 0.01,图 1)。

图 1 HNK对CAL-27细胞增殖的抑制作用 Fig.1 Inhibitory effect of HNK on proliferation of CAL-27 cells. **P < 0.01 vs the control group
2.2 HNK对CAL-27细胞的迁移抑制作用

经统一划痕和不同剂量的HNK处理24 h后,分析两个时间点下细胞的迁移面积。与对照组相比,实验组的细胞划痕愈合能力明显减弱,划痕面积愈合百分比明显减少,迁移能力明显下降,且随着HNK浓度增加抑制细胞迁移的作用更加明显(图 2ABP < 0.01)。

图 2 HNK作用CAL-27细胞24 h后对迁移能力的影响 Fig.2 Migration ability of CAL-27 cells after 24 h of treatment with HNK using a scratch test (Original magnification: × 40) (A) and Statistical analysis of cell migration rate(B). **P < 0.01 vs the control group
2.3 HNK对CAL-27细胞凋亡的影响

经Hoechst33342染料染色后,用荧光显微镜观察对照组细胞形态规则且胞核呈暗蓝光;经低、中、高3个剂量的HNK处理24 h后,数目减少、核固缩且胞核呈亮蓝光。与对照组比较随HNK浓度增加CAL-27细胞凋亡率显著增加(图 34A4BP < 0.01)。

图 3 荧光显微镜观察HNK作用CAL-27细胞24 h后细胞形态学影响 Fig.3 Effect of HNK on nuclear morphology of CAL-27 cells observed with fluorescence microscopy (×200)
图 4 HNK对CAL-27细胞凋亡率的影响 Fig.4 Effect of the HNK on apoptosis rate of CAL-27 cells using flow cytometry to detected cell apoptosis (A) and Statistical analysis of cell apoptosis rate(B). **P < 0.01 vs the control group
2.4 HNK对CAL-27细胞相关蛋白的表达的影响

与对照组比较经不同浓度HNK处理24 h后,p-Pi3k、p-Akt蛋白表达量明显减少(P < 0.05),且Akt蛋白表达量基本不变(图 5ABP>0.05)。

图 5 CAL-27细胞p-Pi3k、p-Akt、Akt蛋白的表达 Fig.5 Expression of p-Pi3k, p-Akt, Akt proteins of CAL-27 cells by Western blot (A) and statistical analysis of p-Pi3k, p-Akt and Akt protein expressions in CAL-27 cells. β-actin was used as a blank control (B). **P < 0.05 and P > 0.05 vs the control group

与对照组比较经不同浓度HNK处理24 h后,p-Fak蛋白表达量明显下降(P < 0.01),而Fak蛋白表达量无明显变化(图 6ABP>0.05)。

图 6 HNK对CAL-27细胞p-Fak、Fak蛋白的表达的影响 Fig.6 Expression of p-Fak、Fak proteins of CAL-27 cells by Western blot (A) and statistical analysis (B). β-actin was used as a blank control. **P < 0.01 vs the control group

与对照组比较经不同浓度和厚朴酚处理24 h后,MMP2和MMP9蛋白表达量明显下降(图 7ABP < 0.05)。

图 7 CAL-27细胞MMP2、MMP9蛋白的表达 Fig.7 Expression of MMP2、MMP9 proteins of CAL-27 cells by Western blot (A) and statistical analysis (B). β-actin was used as a blank control. *P < 0.05, **P < 0.01 vs the control group

与对照组比较经不同浓度和厚朴酚处理24 h后,Bcl-2蛋白表达量明显降低而Bax和Cleaved-Caspase-3蛋白表达量明显升高(图 8ABP < 0.01),呈一定的浓度依赖性。

图 8 CAL-27细胞Bax、Bcl-2、Cleaved-Caspase-3蛋白的表达 Fig.8 Expression of Bax、Bcl-2、Cleaved-Caspase-3 proteins of CAL-27 cells by Western blot (A) and statistical analysis (B). β-actin was used as a blank control. **P < 0.01 vs the control group
3 讨论

舌鳞状细胞癌是口腔癌中的一种顽固且浸润性强的癌症,它的发病率逐渐增加且更加年轻化[10-12],常规的手术治疗可发生远处转移[13]。但近年来,中药单体成分在抗肿瘤领域中的研究逐渐上升,和厚朴酚价格低廉且功效好[14-15]。并且有研究表明,HNK有多种药理作用,并能起到抑制肺癌、卵巢癌等多种肿瘤细胞的作用[16-17],但是否能起到抑制舌癌CAL-27细胞生长的作用尚不清楚。

本实验用MTT法观察HNK对人舌鳞癌CAL-27细胞的影响,检测结果发现,HNK能明显抑制舌癌CAL-27细胞体外增殖,且随HNK浓度增加而抑制作用增强,提示HNK有明显的抗舌癌细胞作用。进而采用划痕实验观察了舌癌细胞的迁移情况,随着HNK浓度的上升迁移能力明显下降。又用Hoechst33342染色法和流式细胞术检测CAL-27细胞凋亡情况的结果发现,在倒置荧光显微镜下观察到对照组细胞形态正常,细胞核完整,染色质均匀;实验组细胞形态不规则,核膜消失,染色质皱缩,胞核碎裂呈亮蓝色,且随着HNK浓度的增加细胞核越来越亮,与HNK在神经胶质瘤细胞中所起到效果相同[18]

Pi3k/Akt信号通路在细胞增殖过程中起正调控作用[19]。在骨肉瘤细胞中,HNK可激活Bax、Cleaved-Caspase-3和PARP的蛋白表达并抑制Bcl-2的蛋白表达来抑制骨肉瘤细胞生长[20]。另有研究表明,抑制Pi3k/Akt通路也可抑制肿瘤细胞增殖并诱导其凋亡[21]。因此,我们采用Western blot蛋白印迹法检测了Pi3k/ Akt通路及凋亡相关蛋白在舌癌细胞中的表达情况,Cleaved-Caspase-3细胞凋亡中扮演重要角色,其活化后可使线粒体外膜通透性增加,从而导致细胞程序性死亡[22-24]。经HNK处理24 h后CAL-27细胞中p-Pi3k、p-Akt、Bcl-2蛋白表达量减少且Bax和Cleaved-Caspase-3蛋白表达量增加,且与HNK呈一定的浓度依赖关系,与上述文献的结果一致,进一步证明了HNK的抗舌癌细胞作用。

局部粘着斑激酶Fak是一种与细胞生长及迁移密切相关的蛋白酪氨酸激酶,大量研究表明Fak在多种肿瘤细胞中存在高表达的现象,因此抑制Fak的活化可能成为治疗肿瘤细胞潜在的新靶点[25-28]。Pi3k/Akt通路在肿瘤细胞迁移过程中也起到重要的调控作用,其下游的MMP2和MMP9也是细胞迁移过程中具有重要作用的蛋白酶,可以被上述通路激活从而增强肿瘤细胞的迁移作用[29-31]。因此我们同样采用Western blot蛋白印迹法检测了经HNK处理24 h后CAL-27细胞中迁移相关蛋白Fak、MMP2和MMP9表达情况,结果显示随着HNK浓度的增加p-Fak蛋白表达量显著下降而Fak蛋白表达量基本不变,MMP2和MMP9蛋白表达量明显减少,这与其它已报道文献中抑制肿瘤迁移现象结果相同[32-34]

综上所述,HNK抑制舌癌CAL-27细胞体外增殖、迁移和诱导CAL-27细胞凋亡可能是通过调控Bcl-2、Bax、Cleaved-Caspase-3和p-Fak的蛋白表达量来实现的。本研究为临床开发中药治疗舌癌提供了实验依据。后续将进行体内试验研究,并探讨HNK抑制舌癌细胞的具体分子机制。

参考文献
[1]
朱红, 寿卫东, 周扬, 等. 1267例南京及周边地区口腔恶性肿瘤统计分析[J]. 口腔医学, 2015, 35(12): 1064-8.
[2]
Zhang J. Effect of adriamycin combined with metformin on biological function of human tongue cancer SSC-15 cells[J]. Oncol Lett, 2019, 17(6): 5674-80.
[3]
Nur SZ, Bernard KBL, Zheng WW, et al. Effects of palbociclib on oral squamous cell carinoma and the role of PIK3CA in conferring resistance[J]. Cancer Biol Med, 2019, 16(02): 264-75. DOI:10.20892/j.issn.2095-3941.2018.0257
[4]
孙小雅, 严汉兴, 贺莎, 等. 舌癌多种治疗方式的临床疗效比较[J]. 中南医学科学杂志, 2018, 46(1): 16-9.
[5]
Gaurav K, Satish R, Dharmalingam S, et al. Honokiol induces cytotoxic and cytostatic effects in malignant melanoma cancer cells[J]. Am J Surg, 2012, 204(6): 868-73. DOI:10.1016/j.amjsurg.2012.09.001
[6]
Rauf A, Patel S, Imran M, et al. Honokiol: An anticancer lignan[J]. Biomed Pharmcother, 2018, 107(11): 555-62.
[7]
Sarrica A, Kirika N, Romeo M, et al. Safety and Toxicology of Magnolol and Honokiol[J]. Planta Med, 2018, 84(16): 1151-64. DOI:10.1055/a-0642-1966
[8]
Liu RX, Ren WY, Ma Y, et al. BMP7 mediates the anticancer effect of honokiol by up regulating p53 in HCT116 cells[J]. Int J Oncol, 2017, 51(3): 907-17. DOI:10.3892/ijo.2017.4078
[9]
曲莉, 张蕊. 和厚朴酚对鼻咽癌细胞株的增殖、迁移与侵袭能力的影响及机制[J]. 临床耳鼻咽喉头颈外科杂志, 2017, 31(2): 88-90.
[10]
Zhang H, Liu J, Fu X, et al. Identi fi cation of Key Genes and Pathways in Tongue Squamous Cell Carcinoma Using Bioinformatics Analysis[J]. Med Sci Monit, 2017, 14(23): 5924-32.
[11]
Jeon JH, Kim MG, Park JY, et al. Analysis of the outcome of young age tongue squamous cell carcinoma[J]. Maxillofac Plast Reconstr Surg, 2017, 39(1): 41-7.
[12]
史毅, 吴伟忠, 霍安. 补骨脂乙素对Tca8113细胞迁移及侵袭的抑制作用及其机制[J]. 中国药理学通报, 2015, 31(12): 1741-5. DOI:10.3969/j.issn.1001-1978.2015.12.022
[13]
董文杰, 孙越, 张思扬. 早期舌癌复发的相关因素及预防措施[J]. 实用癌症杂志, 2015, 30(11): 1729-31. DOI:10.3969/j.issn.1001-5930.2015.11.044
[14]
Yan Z, Lai Z, Lin J. Anticancer Properties of Traditional Chinese Medicine[J]. Comb Chen High T Scr, 2017, 20(5): 423-9.
[15]
Pan J, Lee Y, Wang Y, et al. Honokiol targets mitochondria to halt cancer progression and metastasis[J]. Mol Nutr Food Res, 2016, 60(6): 1383-95. DOI:10.1002/mnfr.201501007
[16]
Lee JS, Sul JY, Park JB, et al. Honokiol induces apoptosis and suppresses migration and invasion of ovarian carcinoma cells via AMPK/mTOR signaling pathway[J]. Int J Mol Med, 2019, 43(5): 1969-78.
[17]
Cen M, Yao Y, Cui L, et al. Honokiol induces apoptosis of lung squamous cell carcinoma by targeting FGF2-FGFR1 autocrine loop[J]. Cancer Med, 2018, 7(12): 6205-18. DOI:10.1002/cam4.1846
[18]
Guo YB, Bao XJ, Xu SB, et al. Honokiol induces cell cycle arrest and apoptosis via p53 activation in H4 human neuroglioma cells[J]. Int J Clin Exp Med, 2015, 8(5): 7168-75.
[19]
黄锐, 陈琦. PI3K/Akt信号转导通路对肿瘤的影响[J]. 医学理论与实践, 2016, 29(19): 3324-7.
[20]
Yang J, Zou Y, Jiang D. Honokiol suppresses proliferation and induces apoptosis via regulation of the miR-21/PTEN/PI3K/AKT signaling pathway in human osteosarcoma cells[J]. Int J Mol Med, 2018, 41(4): 1845-54.
[21]
Zhu X, Song X, Xie K, et al. Osthole induces apoptosis and suppresses proliferation via the PI3K/Akt pathway in intrahepatic cholangiocarcinomal[J]. Int J Mol Med, 2017, 40(4): 1143-51. DOI:10.3892/ijmm.2017.3113
[22]
吴柯, 薛莱, 韩萍. 和厚朴酚对人结肠癌细胞及Wnt信号通路的影响及调控作用[J]. 检验医学与临床, 2019, 16(12): 1643-5. DOI:10.3969/j.issn.1672-9455.2019.12.004
[23]
Kalkavan H, Green D R. MOMP, cell suicide as a BCL-2 family business[J]. Cell Death Differ, 2018, 25(1): 46-55. DOI:10.1038/cdd.2017.179
[24]
Ren L, Cao Q X, Zhai F R, et al. Asiatic acid exerts anticancerpotential in human ovarian cancer cells via suppression of PI3K/Akt/mTOR signalling[J]. Pharm Biol, 2016, 54(11): 2377-82. DOI:10.3109/13880209.2016.1156709
[25]
Zheng D, Duan H, Wang S, et al. FAK regulates epithelial-mesenchymal transition in adenomyosis[J]. Mol Med Rep, 2018, 18(6): 5461-72.
[26]
Iqbal J, Abbasi BA, Ahmad R, et al. Ursolic acid a promising candidate in the therapeutics of breast cancer: Current status and future implications[J]. Biomed Pharmacother, 2018, 108: 752-6. DOI:10.1016/j.biopha.2018.09.096
[27]
Anandani C, Metgud R, Ramesh G, et al. Awareness of general dental practitioners about oral screening and biopsy procedures in Udaipur, India[J]. Oral Health Prev Dent, 2015, 13(6): 523-30.
[28]
刘宁宁, 冯蓓, 段伟, 等. RNA干扰黏着斑激酶表达对宫颈癌细胞增殖、侵袭、迁移能力、细胞凋亡及Caspase-3相对表达量的影响[J]. 广西医学, 2019, 41(10): 1268-71.
[29]
Chai R, Fu H, Zheng Z, et al. Resveratrol inhibits proliferation and migration through SIRT1 mediated post-translational modification of PI3K/AKT signaling in hepatocellular carcinoma cells[J]. Mol Med Rep, 2017, 16(6): 8037-44. DOI:10.3892/mmr.2017.7612
[30]
Zeng YF, Xiao YS, Liu Y, et al. Formin-like 3 regulates RhoC/FAK pathway and actin assembly to promote cell invasion in colorectal carcinoma[J]. World J Gastroenterol, 2018, 24(34): 3884-97. DOI:10.3748/wjg.v24.i34.3884
[31]
Wen X, Wang N, Zhang F, et al. Overexpression of SCARA5 inhibits tumor proliferation and invasion in osteosarcoma via suppression of the FAK signaling pathway[J]. Mol Med Rep, 2016, 13(3): 2885-91. DOI:10.3892/mmr.2016.4857
[32]
Allen K, Farah C. Screening and referral of oral mucosal pathology: a check-up of Australian dentists[J]. Aust Dent, 2015, 60(1): 52-8. DOI:10.1111/adj.12261
[33]
Wang EM, Fan QL, Yue Y, et al. Ursolic Acid Attenuates High Glucose-Mediated Mesangial Cell Injury by Inhibiting the Phosphatidylinositol 3-Kinase/Akt/Mammalian Target of Rapamycin (PI3K/Akt/mTOR) Signaling Pathway[J]. Med Sci Monit, 2018, 24: 846-54. DOI:10.12659/MSM.907814
[34]
Song XL, Ju RJ, Xiao Y, et al. Application of multifunctional targeting epirubicin liposomes in the treatment of non-small-cell lung cancer[J]. Int J Nanomedicine, 2017, 12: 7433-51. DOI:10.2147/IJN.S141787