肺癌的发病率和死亡率都比较高，严重威胁人类健康，患者5年存活率只有18%。探索与研究肺癌预防和治疗的新方法具有重要的意义。基于食物及其简单提取物的干预措施在癌症预防中获得了越来越多的关注^[1-3]。肌醇和木樨草素在许多可食用植物中广泛存在，属于膳食营养成分^[4-5]。一些研究显示肌醇和木樨草素均具有较好的抗癌活性^[6-9]。不同具有抗癌活性的膳食营养成分合用时可能会产生相加或协同的联合效用，在同等剂量下取得更好的预防效果，增加通过膳食干预进行癌症的化学预防的可行性^[10-12]。肌醇和木樨草素的联合应用尚未见报道。本研究试图探索肌醇和木樨草素的联合应用效果，对肌醇和木樨草素对A549细胞增殖和迁移的影响及其作用机制进行了初步的探讨。

人肺腺癌细胞A549细胞株（中国科学院上海细胞库提供）；永生化人支气管上皮细胞Beas-2B细胞株（ATCC细胞库提供）；肌醇和木樨草素（sigma）；RPMI 1640细胞培养基、DMEM细胞培养基和胎牛血清（Gibco）；单克隆抗体PDK1、p-PDK1、Akt、p-Akt、GAPDH和辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔二抗（CST）；ECL免疫印迹分析试剂盒（Thermo）；BCA蛋白浓度测定试剂盒和蛋白标准、Western及IP细胞裂解液和苯甲基磺酰氟化物（PMSF）（碧云天）。

A549细胞株接种于含10%胎牛血清的RPMI 1640培养基中，Beas-2B细胞株接种于含5%胎牛血清的DMEM培养基中，培养基中青霉素和链霉素的浓度均为100 U/mL，置于37 ℃、CO₂体积分数5%的细胞培养箱中培养。

取对数生长期细胞接种于96孔培养板中（3×10³/孔），培养过夜，待细胞贴壁后，用不同浓度的肌醇、木樨草素或二者的混合溶液处理细胞，每个浓度设平行孔6个，对照孔加入不含药物的含有0.1% DMSO的培养液，于37 ℃、5% CO₂条件下继续培养24 h或48 h，终止培养前每孔加入噻唑蓝溶液（MTT，5 mg/mL）10 μL，继续培养4 h，吸去上清液，每孔加入DMSO 100 μL，水平振摇10 min，在490 nm波长处测量吸光度（A）值，计算细胞存活率。细胞存活率=实验组A值/对照组A值× 100%。该实验重复了3次。

用含0.1% DMSO的培养液作为溶剂对照，用肌醇（10 mmol/L）和/或木樨草素（20 μmol/L）处理细胞，48 h后，将各处理组细胞分别重新接种到6孔培养板中（1 × 10⁵/孔）。待细胞貼壁并长至九成满时，血清饥饿12 h。用小枪头制造等宽划痕，用PBS冲洗掉悬浮细胞，继续无血清培养。每组细胞选取5个观察点，之后分别在0 h和24 h时间点对所选择的观察点进行拍照。划痕弥合度计算公式为：[Δarea/area (day₀)]×100%。

用含0.1% DMSO的培养液作为溶剂对照，用肌醇（10 mmol/L）和/或木樨草素（20 μmol/L）处理细胞，48 h后，将各处理组细胞消化制成单细胞混悬液，稀释后接种到六孔细胞培养板（1×10³/孔）。继续培养7~10 d，终止细胞培养。取适量4%多聚甲醛固定液固定30 min，随后用0.5%结晶紫染色液缓慢振摇染色1 h。晾干，拍照。计数每个培养孔内形成的克隆。该实验重复了3次。

用含0.1% DMSO的培养液作为溶剂对照，用肌醇（10 mmol/L）和/或木樨草素（20 μmol/L）处理细胞，48 h后，终止培养。将收集起来的各处理组细胞按1:10的比例加入适量冰上溶解的Western及IP细胞裂解液（碧云天），置于冰上裂解30 min，4 ℃，12 000 r/min离心，30 min，取上清液，用BCA蛋白定量法测定上清液蛋白浓度。每泳道取50 μg总蛋白上样，经10% SDS-PAGE凝胶垂直电泳分离蛋白，随后将之转移到PVDF膜上，5%脱脂奶粉室温封闭1 h，与抗3-磷酸肌醇依赖性蛋白激酶1（PDK1）、p-PDK1、Akt、p-Akt和GAPDH抗体（1: 1000）4 ℃孵育过夜，Tris-HCl缓冲盐溶液（TBST）充分洗膜后，用辣根过氧化酶标记的羊抗兔二抗（1:2000）室温孵育1 h，TBST充分洗膜后用ECL免疫印迹分析试剂盒曝光并拍照，实验重复3次。条带灰度用Gel-pro analyzer4图像分析软件（Media Cybernetics）分析，计算目的条带同相对应的GAPDH条带间的相对灰度值。

实验所得数据用均数±标准差表示，然后经SPSS18.0软件采用Student-Newman-Keuls test法分析组间的统计学差异。当P < 0.05时，认为组间的差异具有统计学意义。

如图 1A，B所示，同对照组相比，10 mmol/L以上浓度的肌醇和20 μmol/L以上浓度的木樨草素作用48 h后才对A549细胞具有一定的毒性作用。与对照组相比，A549细胞的增殖活性随着肌醇和木樨草素浓度的增加和作用时间的延长而下降。在A549细胞，肌醇作用48 h的半数致死浓度（LC₅₀）为65.31 mmol/L，木樨草素作用24 h和48 h的半数致死浓度（LC₅₀）分别为80.50 μmol/L和42.95 μmol/L。如图 1C所示，同对照组相比，单独或联合应用肌醇（10 mmol/L）和木樨草素（20 μmol/L）48 h后对Beas-2B细胞的活性没有明显的抑制作用，各组间没有明显的差别，但是同样浓度的肌醇或木樨草素单独应用或联合应用48 h后，肌醇处理组、木樨草素处理组和联合处理组A549细胞的活性分别为对照组的92%、83%和70%，组间差别显著，联合处理组A549细胞的活性下降最为明显。

图 1(Figure 1)

图 1 细胞活性检测 Figure 1 Effect of myo-inositol (MI) and luteolin (LUT) on proliferation of A549 cells (A, B) and Beas-2B cells (C). *P < 0.05 vs control group; #P < 0.05 vs MI group; & P < 0.05 vs LUT group

用10 mmol/L肌醇和20 μmol/L木樨草素单独或联合作用于A549细胞和Beas-2B细胞48 h后，用平板克隆形成实验检测肌醇和木樨草素对这两种细胞克隆形成的影响，结果如图 2所示，Beas-2B细胞形成的克隆团数目比较少和松散，处理组同对照组间没有显著性差别；对照组A549细胞能在培养平面形成许多大而紧密的细胞克隆团；肌醇处理组和木樨草素处理组A549细胞形成的克隆团数目与对照组相比有所减少，联合处理组A549细胞形成的克隆团数目远少于对照组细胞和另外2个处理组的细胞，形成的克隆团比较小。这些结果表明该剂量的肌醇和木樨草素可选择性的抑制A549细胞的克隆形成，合用时抑制作用要强于肌醇或木樨草素单独应用时。

图 2(Figure 2)

图 2 平板克隆形成实验结果 Figure 2 Colony formation by A549 cells and Beas-2B cells treated for 48 h with MI and LUT alone or in combination. A: Representative images of cell colonies of A549 and Beas-2B cells; B: Relative colony number of A549 and Beas-2B cells. *P < 0.05 vs control group; #P < 0.05 vs MI group; & P < 0.05 vs LUT group

用10 mmol/L肌醇和20 μmol/L木樨草素单独或联合作用于A549细胞和Beas-2B细胞48 h，用划痕实验检测肌醇和木樨草素对细胞侧向迁移能力的影响，结果如图 3所示。在划痕后24 h，对照组、肌醇处理组、木樨草素处理组和联合处理组A549细胞的划痕愈合度分别是29.99%、24.61%、13.08%和8.65%，联合处理组A549细胞的划痕愈合程度显著低于其它3组细胞。然而，经过同样的处理，Beas-2B细胞各个处理组间划痕愈合度的差别不具有统计学意义。

图 3(Figure 3)

图 3 划痕实验结果 Figure 3 Wound closure in A549 cells and Beas-2B cells treated for 48 h with myo-inositol (MI) and luteolin (LUT)alone or in combination. A: Representative images of wound closure of A549 and Beas- 2B cells. Scale bar: 200 μm; B: Quantitative analysis of wound closure rates of A549 and Beas-2B cells. *P < 0.05 vs control group; #P < 0.05 vs MI group; & P < 0.05 vs LUT group

为了检测肌醇和/或木樨草素对A549细胞的抑制作用同PDK1和Akt活化的抑制是否平行，我们检测了A549细胞中p-PDK1和p-Akt的表达水平，如图 4所示。同对照组相比，肌醇、木樨草素可引起A549细胞pPDK1和p-Akt蛋白质表达的减少，3个处理组A549细胞中蛋白质表达水平的改变趋势一致，联合处理组变化幅度较大。结果表明用肌醇、木樨草素单独或联合处理A549细胞时，可能是通过这两个关键蛋白调控相应的通路发挥的抑制作用。

图 4(Figure 4)

图 4 Western blotting检测结果 Figure 4 Protein levels in A549 cells treated for 48 h with myo-inositol (MI) and luteolin (LUT) alone or in combination detected by Western blotting. *P < 0.05 vs control group; #P < 0.05 vs MI group; & P < 0.05 vs LUT group

肺癌发病率高，在男性和女性癌症发病率中肺癌发病率均位居第2位^[13]。PI3K/PDK1/Akt通路是一个致癌的信号通路，其失调参与了多种癌症的发展^[14-15]。PDK1和Akt都是PI3K/PDK1/Akt信号通路的重要组成成分。PDK1是一个丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶，是PI3K/PDK1/Akt通路的第一个节点，能激活多个下游的效应因子，在多种肿瘤细胞中高表达，同晚期肺癌较低的分化程度相关^[16-19]。Akt是PDK1下游的一个关键的效应因子，Akt的高表达在肺癌组织和细胞系中常见，在肺癌的发生发展过程中发挥重要作用^[20-22]。抑制PDK1和Akt的表达可明显抑制肿瘤细胞的增殖、克隆形成、迁移和侵袭，提示抑制PDK1或Akt可减少癌症的进展，调控二者表达水平的改变可能是预防癌症进展和治疗的合理的治疗策略^[23-26]。

癌症发病率在不同国家和地区相差悬殊，主要归因于环境因素，特别是膳食因素^[27-29]。用具有抗癌活性的天然化学物质进行癌症化学预防或抑制其进一步发展是一种可行的方法^{[28, 30]}。联合应用不同的天然活性化学物质对癌细胞共处理时可能会在减少毒副作用的同时取得更好的处理效果^[11]。如HJ Kim等人的研究显示肌醇（10 mmol/L）同六磷酸肌醇酯（IP6）共处理前列腺癌PC3细胞时对细胞生长的抑制程度就明显高于单独应用IP6^[31]。

肌醇和木樨草素是从可食用植物中提取得到的膳食营养成分，具有一定的抗癌活性^[6-9]。本实验研究首次探寻了肌醇和木樨草素的联合应用效果。本实验观察了肌醇和木樨草素对A549细胞活性、增殖和迁移的影响，结果显示肌醇和木樨草素都能降低A549细胞的活性，且呈浓度依赖性。用低浓度水平的肌醇（10 mmol/L）和木樨草素（20 μmol/L）处理A549细胞和Beas-2B细胞后，联合处理组A549细胞的活性、平板克隆形成和划痕愈合受到的抑制较肌醇或木樨草素单独应用时更为明显。与此同时，同样的处理对Beas-2B细胞的活性、克隆形成和划痕愈合程度没有明显的影响，安全性比较好。这些结果表明肌醇和木樨草素的合用能特异性的抑制A549细胞的增殖和迁移，较单用时效果更好，二者的合用可能产生了相加或协同的作用。

肌醇可调节不同的信号通路，有研究显示肌醇的添加能降低PI3K的表达，抑制Akt的活化，调节癌细胞的上皮间质转化^[32-33]。木樨草素是一种膳食黄酮类化合物，可抑制过氧化氢诱导的血管平滑肌细胞Akt的活化^[34]。为探讨肌醇和木樨草素合用时对A549细胞发挥抑制作用的可能的作用机制，本研究检测了A549细胞中PDK1和Akt蛋白表达水平的改变，结果可见：同对照组相比，联合处理组细胞中p-PDK1和p-Akt的表达较肌醇或木樨草素单用时出现了更为明显的下调，提示肌醇和木樨草素的合用可能是通过抑制PDK1和Akt的活性发挥的作用。