前列腺癌是欧美国家男性最常见的恶性肿瘤，其死亡率仅次于肺癌^[1]。随着饮食结构的改变、人口老年化和医疗水平的提高，我国前列腺癌的发病率和检出率呈逐年升高趋势^[2]。前列腺癌发病隐匿，多数患者初次就诊时就已经发生转移，丧失根治性手术或根治性放疗的机会。国内的一项研究结果显示，新诊断的前列腺癌患者中，有54%的患者在诊断时就已经发生远处转移，未转移患者的5年相对生存率为80%，而发生远处转移患者的5年相对生存率降至30%^[3]，其无进展生存时间也只有未转移患者的一半^[4]。肿瘤转移是前列腺癌患者的首要死亡原因，所以早期准确预测前列腺癌转移和阻断转移信号通路是目前前列腺癌研究的难点和热点，极具临床意义和研究价值^[5]。

鼠双微体2癌基因结合蛋白（MTBP）是鼠双微体2（MDM 2）的结合蛋白，它能够通过抑制MDM 2的自身泛素化来维持MDM 2的稳定^[6-8]，而MDM2是肿瘤抑制基因P53的负向调控因子^[9]。目前，已有多项研究^[10-17]表明MTBP在肿瘤的发生发展过程中扮演了重要角色，且MTBP的高表达与恶性肿瘤的转移侵袭及临床不良预后密切相关。Lu等^[11]发现MTBP的表达水平与肝癌患者的不良预后呈正相关，上调MTBP的表达可显著增强肝癌细胞的转移侵袭能力。Grieb等^[12]的研究结果提示MTBP在乳腺癌中高表达，且其表达水平与患者的不良预后密切相关，MTBP表达的下调可抑制肿瘤的增殖。相关研究报道^{[10, 18]}，在前列腺癌组织中MTBP的表达明显高于癌旁组织，且MTBP的高表达与肿瘤的恶性程度和临床预后有关，提示MTBP可能参与前列腺癌的发生及进展。然而，MTBP在前列腺癌细胞中的生物学功能和作用机制目前国内外尚未见报道。本文以两种转移能力不同的前列腺癌细胞为研究对象，通过调控MTBP的表达水平，探讨MTBP对前列腺癌细胞迁移及侵袭能力的影响及其作用机制，为深入研究探讨前列腺癌的转移机制提供重要的理论基础与实验依据。

前列腺癌细胞株22RV1、DU145及Lncap均购自美国典型物保藏中心。

RPMI 1640培养基、胎牛血清和胰蛋白酶购自BI公司；Opti-MEM培养基，Lipofentamine2000，总蛋白提取试剂盒，蛋白浓度测定试剂盒，蛋白上样缓冲液5xloading buffer，PVDF膜，蛋白分子marker，MTBP兔多克隆抗体，GAPDH鼠单克隆抗体，辣根过氧化物酶标记的羊抗兔抗体，辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠抗体，ECL化学发光液；BD Biocoat Matrigel基质；磷酸盐缓冲液（PBS），盐酸，甲醇，乙醇，TBS，吐温等试剂均为国产分析纯，所有缓冲液均用ddH₂O水配制。

前列腺癌细胞培养于含10%胎牛血清，100 U/mL青霉素和100 μg/mL链霉素的RPMI 1640培养基中，于37 ℃、5% CO₂温育箱中培养，取对数生长期的细胞用于实验。转染前1 d将2~3×10⁵细胞接种于6孔板中，当细胞融合度达50%~60%时，按Lipofectamine2000脂质体说明书转染细胞。每次实验设3个组：空白对照组（control）、阴性对照组（si-NC/p-NC）、实验组（si-MTBP/p-MTBP）。其中，si-MTBP正义链为5'-CCATGTACCATTAGTAA CA-3'，转染6~8 h后更换培养液。转染48 h后，提取各组细胞的蛋白质，检测各项相关指标。

设置分组，提取各组细胞总蛋白，加入上样缓冲液，95 ℃下变性15 min，取等量蛋白进行10%聚丙烯酰胺凝胶电泳（80 V，30 min；100 V，60 min）分离蛋白，湿法（200 mA，120 min）转印至PVDF膜；用含5%牛血清白蛋白（BSA）封闭液室温封闭l h；一抗兔抗人MTBP多克隆抗体1:1000、鼠抗人GAPDH单克隆抗体1:10 000，分别置于4 ℃孵育过夜；TBST液洗膜3次，每次洗10 min；二抗羊抗兔IgG 1:10 000、羊抗鼠IgG 1:10 000分别室温孵育1 h；TBST液洗膜5次，每次洗5 min；ECL发光试剂盒显影；Bio.Rad凝胶成像系统获取图像。

收集各组细胞，分别以5×10⁵/孔接种至6孔板，细胞汇合度接近100%时，用200 μL枪头比着直尺在6孔板内画横竖两条直线，宽度保持一致，PBS洗3次，清除漂浮细胞，加入无血清培养基，放入37 ℃、5% CO₂温育箱中培养，于40倍倒置显微镜下观察，并分别于0、24 h在同一部位拍照，计算划痕愈合率，划痕愈合率（%）=（0 h划痕面积-24 h划痕面积）/0 h划痕面积×100%，实验重复3次。

迁移实验：将各组细胞消化，制成细胞悬液，将含1×10⁵细胞的200 μL悬液加入上室，下室加入750 μL含10% FBS的1640培养基，每组设3个复孔，放入37 ℃、5% CO₂温育箱中培养，48 h后取出小室，吸弃上室培养基，用棉签轻拭去上室细胞，4%多聚甲醛固定15 min，结晶紫染色10 min，PBS洗涤3次，于100倍倒置显微镜下随机选取5个视野拍照计数。侵袭实验：预先用无血清1640培养基将50 mg/L的Matrigel 1:4稀释后，包被Transwell小室底部膜，4 ℃风干，水化基底膜。其余步骤同迁移实验。

应用SPSS 22.0统计软件进行统计学检验，计量数据采用均数±标准差表示，组间比较用两样本t检验，以P < 0.05认为差异有统计学意义。图片数据的采集及处理用Graphpad+Prism5和Image J软件进行。每次实验重复3次以上。

Western blot分析显示，MTBP在局限性前列腺癌细胞22RV1中有较低水平的表达，而在转移性前列腺癌细胞DU145和Lncap中的表达显著高于22RV1细胞（图 1），提示MTBP表达水平与前列腺癌细胞的转移能力呈正相关，尤其在分化程度低，转移侵袭能力强的DU145细胞中表达最高。

图 1(Fig.1)

图 1 不同前列腺癌细胞中MTBP的表达水平 Fig.1 Protein expression of MTBP in different prostate cancer cells detected by Western blotting

Western blot分析显示，siRNA干扰前列腺癌DU145细胞，能显著降低细胞中MTBP的蛋白表达水平（图 2）；而MTBP质粒转染22RV1细胞，能显著提高细胞中MTBP的蛋白表达水平（图 2）。

图 2(Fig.2)

图 2 siRNA和MTBP质粒对前列腺癌细胞内MTBP表达的影响 Fig.2 Cellular expression of MTBP in prostate cancer cells after transfection with si-MTBP and p-MTBP. A: Effect of si-MTBP on MTBP expression in DU145 cells; B: Effect of p-MTBP on MTBP expression in 22RV1 cells

划痕实验结果显示，转染siRNA48 h后，沉默组siMTBP细胞划痕面积愈合百分比与control组及si-NC组相比均明显减少（P < 0.01，图 3）。同样，Transwell迁移实验显示，转染siRNA 48 h后，沉默组si-MTBP细胞从上室穿过小室膜至下室的细胞数较control组及si-NC组也明显减少（P < 0.01，图 3）。

图 3(Fig.3)

图 3 划痕实验和Transwell迁移实验观察沉默MTBP基因对DU145细胞迁移能力的影响 Fig.3 Migration ability of DU145 cells after si-MTBP transfection shown by wound healing assay (Original magnification: ×40) and Transwell assay (×100). A: Wound healing assay; B: Quantitative analysis of wound healing area (***P < 0.01); C: Transwell assay; D: Quantitative analysis of cell migration (***P < 0.01)

Transwell侵袭实验显示，转染siRNA 48 h后，沉默组si-MTBP细胞从上室穿过小室膜至下室的细胞数较control组及si-NC组明显减少（P < 0.01，图 4）。

图 4(Fig.4)

图 4 Transwell侵袭实验观察沉默MTBP基因对DU145细胞侵袭能力的影响 Fig.4 Changes in invasion ability of DU145 cells after si-MTBP transfection shown by Matrigel-coated Transwell assay (×100). A: Matrigel-coated Transwell assay; B: Quantitative analysis of cell invasion (***P < 0.01)

划痕实验结果显示，转染MTBP质粒48 h后，过表达组p-MTBP组细胞划痕面积愈合百分比与control组及p-NC组相比均明显增加（P < 0.01，图 5）。同样，Transwell迁移实验显示，转染MTBP质粒48 h后，过表达组p-MTBP组细胞从上室穿过小室膜至下室的细胞数较control组及p-NC组也明显增加（P < 0.01，图 5）。

图 5(Fig.5)

图 5 划痕实验和Transwell迁移实验观察过表达MTBP基因对22RV1细胞迁移能力的影响 Fig.5 Migration ability of 22RV1 cells after p-MTBP transfection shown by wound healing assay (×40) and Transwell assay (×100). A: Wound healing assay; B: Quantitative analysis of wound healing area (***P < 0.01); C: Transwell assay; D: Quantitative analysis of cell migration (***P < 0.01)

Transwell侵袭实验显示，转染MTBP质粒48 h后，过表达组p-MTBP组细胞从上室穿过小室膜至下室的细胞数较control组及p-NC组明显增加（P < 0.01，图 6）。

图 6(Fig.6)

图 6 Transwell侵袭实验观察过表达MTBP基因对22RV1细胞侵袭能力的影响 Fig.6 Invasion ability of 22RV1 cells after p-MTBP transfection shown by Matrigel-coated Transwell assay (×100). A: Matrigel-coated Transwell assay; B: Quantitative analysis of cell invasion (***P < 0.01)

Western blot结果显示，抑制MTBP的表达可使前列腺癌DU145细胞的E-cadherin蛋白表达水平升高（图 7），而过表达的前列腺癌22RV1细胞中E-cadherin蛋白表达水平降低（图 7）。

图 7(Fig.7)

图 7 Western blotting实验检测沉默和过表达MTBP基因对前列腺癌细胞上皮间质转化分子标志蛋白E-cadherin蛋白的影响 Fig.7 Expression of E-cadherin detected by Western blotting in prostate cancer cells after si-MTBP and p-MTBP transfection. A: Expression of E- cadherin detected by Western blotting in DU145 cells after si-MTBP transfection; B: Expression of E-cadherin detected by Western blotting in 22RV1 cells after p-MTBP transfection

众所周知，发生转移的肿瘤比未发生转移的肿瘤更难治疗^[19-20]。肿瘤发生转移是前列腺癌进展及治疗失败的重要原因，探索前列腺癌转移及进展的机制是当前研究的热点和难点。目前，已有多项研究显示MTBP在前列腺癌组织中高表达，并与前列腺癌的恶性程度和临床预后不良有着密切联系^{[10, 18]}。本研究检测了MTBP在3种转移能力不同的前列腺癌细胞22RV1，DU145以及Lncap中的表达水平，发现MTBP在转移性前列腺癌细胞DU145中表达最强，Lncap细胞次之，局限性前列腺癌细胞22RV1中则表达最低，提示MTBP的高表达与前列腺癌细胞的转移能力呈正相关。然而，目前并不清楚MTBP在前列腺癌中的表达增高是前列腺癌发生发展的结果，还是增强前列腺癌转移侵袭能力的重要分子生物学机制？这有助于进一步探讨MTBP用于前列腺癌的预后评估，还是将其作为治疗的分子靶点。近年来的多项研究^[10-13]显示，MTBP在乳腺癌以及肝细胞癌等多种恶性肿瘤中高表达，是肿瘤转移侵袭的促进因子。因此，我们猜测MTBP的高表达可能是前列腺癌发生转移侵袭的重要分子学机制。为了进一步探究MTBP对前列腺癌细胞转移侵袭能力的影响，我们采用siRNA干扰技术下调DU145细胞MTBP的表达，质粒转染上调22RV1细胞MTBP的表达，通过划痕实验、Transwell迁移实验以及Transwell侵袭实验，发现下调MTBP的表达后，DU145细胞的迁移能力及侵袭能力均明显下降，而上调MTBP的表达可以显著增强22RV1细胞的迁移侵袭能力，表明MTBP可能参与促进前列腺癌细胞的迁移及侵袭。

那么，MTBP到底是如何促进前列腺癌细胞的迁移及侵袭呢？

研究表明，肿瘤细胞发生上皮细胞间充质转化（EMT）对肿瘤转移及进展起着决定性作用^[21-26]。在上皮细胞间充质转化的过程中，具有极性的上皮细胞转化为运动能力增强的间质细胞，从而更易于在细胞外基质中自由移动，导致细胞的转移能力增强^[27-30]。其中，E-钙黏着蛋白（E-cadherin）的减少或丢失是EMT最重要的标志性变化^[31]，也是肿瘤细胞获得转移侵袭能力的重要特征^[32-33]。Lu等^[11]的研究结果表明MTBP可通过促进MDM 2介导的E-Cadherin降解从而增强肝癌细胞的转移侵袭能力。而我们的研究也发现，抑制MTBP的表达可使DU145细胞的E-cadherin蛋白表达水平升高，而MTBP过表达的22RV1细胞中E-cadherin蛋白表达水平降低。由此推测，MTBP可能是通过诱导EMT从而促进前列腺癌细胞的转移侵袭。

综上所述，本研究证实了MTBP的表达水平与前列腺癌细胞的转移侵袭能力相关，以及MTBP对肿瘤细胞生物学行为能力的影响可能是其促进肿瘤转移侵袭的重要病理生理学机制之一，表明针对MTBP靶点的基因治疗可能成为治疗前列腺癌的潜在手段。但本实验的局限之处在于缺少体内试验，以及MTBP介导上皮间质转化促进前列腺癌细胞迁移及侵袭的具体机制仍有待进一步研究。