2. 中南大学湘雅医学院医学检验系,湖南 长沙 410013
2. Department of Laboratory Medicine, Xiangya School of Medicine, Central South University, Changsha 410013, China
血流感染引起的菌血症、败血症等是导致患者急性死亡的原因之一[1]。据卫生部全国细菌耐药监测网血流感染细菌耐药监测报告[1]显示,大肠埃希菌是导致血流感染最常见细菌,近年来发现大肠埃希菌ST131型(ST131)是一种高毒力的克隆型,该型别在全球范围内快速扩散[2],Cho等[3]研究发现韩国大肠埃希菌引起的血流感染中ST131比例为30.9%,Can等[4]发现土耳其大肠埃希菌所致血流感染中,ST131比例4年间从13%上升至23%,而国内关于血流感染中ST131的流行病学研究少见,相关研究[5-6]显示上海的流行率为13.3%~22.2%,董敏等[7]报道浙江地区为8.2%,提示不同国家和地区可能流行情况存在差异,而湖南地区尚缺乏相关数据。
目前研究[8-9]显示ST131菌株主要属于O25b:H4血清型,最近在几个国家也报道了存在一小部分O16:H5 ST131菌株[10-12]。然而,目前全球关于血流感染中ST131的研究,除了Ciesielczuk等[13]报道O16-ST131外,其余研究均未研究O血清型分型[3-7],或漏检O16亚型[14-15]。因此,研究血流感染中O16-ST131菌株仍十分必要。因此,本研究目的在于研究本地区血流感染大肠埃希菌ST131型的分布、O血清学分型以及耐药性,分析ST131与非ST131耐药性是否存在差异,以及ST131感染者与非ST131感染者临床特征是否存在差异,为防治引起血流感染的ST131的流行和传播打下基础。
1 资料和方法 1.1 研究对象收集中南大学湘雅医院2016年1~12月血液标本中分离的大肠埃希菌菌株144株,同一患者多次分离到的菌株不重复计入。质控菌株为大肠埃希菌ATCC25922。
1.2 仪器与试剂Vitek 2全自动微生物鉴定系统及配套用细菌鉴定卡(梅里埃);Biometra PCR扩增仪(ABI);电泳仪(Horfer);凝胶成像及分析系统(SynGene)。血琼脂、MH琼脂(天和)。
1.3 方法 1.3.1 DNA模板提取挑取血平板上经2代纯培养的细菌菌落3~5个于200 µL灭菌双蒸水中磨匀,97 ℃煮沸10 min,快速冰浴冷却2 min,13 000 r/min离心10 min,吸取上清即细菌DNA,作为PCR反应模板备用。
1.3.2 系统发育分群检测参照文献Clermont等[16]方法应用多重PCR对大肠埃希菌进行系统发育分群,所需引物序列见表 1。四重PCR扩增反应体系为24 µL:2× Taq PCR Master Mix 12 µL,引物chuA、yjaA、TspE4.C2上下游引物各1 µL,ArpAgpE上下游引物各2 µL,DNA模板2 µL。PCR扩增条件:94 ℃预变性4 min,两步法94 ℃变性5 s,59 ℃退火及延伸20 s,30个循环,最后72 ℃延伸5 min。E组和C组特异性PCR扩增时,需加入trpBA作为内对照,反应体系为20 µL:2×Taq PCR Master Mix 10 µL,引物4 µL(上下游引物各2 µL),trpBA 2.4 µL(上下游引物各1.2µL),DNA模板2 µL,灭菌双蒸水1.6 µL。PCR扩增条件:94 ℃预变性4 min,两步法94 ℃变性5 s,57 ℃(E组)或59 ℃(C组)退火及延伸20 s,30个循环,最后72 ℃延伸5 min。对扩增产物进行电泳、拍照,并根据表 2进行结果判读。
![]() |
表 1 系统发育群引物序列及产物大小 Tab.1 Primer sequences and sizes of PCR products used in the phylogenetic grouping |
![]() |
表 2 系统发育群结果判读 Tab.2 Interpretation of the results of phylogenetic grouping |
参考Johnson等[17]文献,采用等位基因特异性PCR检测pabB和trpA鉴定ST131菌株,采用PCR扩增O分型基因鉴别O16和O25b型别。检测ST131菌株时,PCR扩增反应体系为20 μL:10 × buffer 2 μL,每种dNTPs 200 μmol,Taq酶2 U,MgCl2 1.5 mmol,pabB上下游各20 pmol,trpA、uidA上下游各15 pmol,DNA模板2 μL;检测O16和O25b型别时,反应体系为20 μL:10×buffer 2 μL,每种dNTPs 200 μmol,Taq酶2 U,MgCl2 1.5 mmol,rfbO16及rfbO25b上下游各20 pmol,uidA上下游各10 pmol,DNA模板2 μL。PCR扩增条件:94 ℃预变性4 min,94 ℃变性5 s,63 ℃(ST131鉴定)或59 ℃(O分型)退火及延伸20 s,30个循环,最后72 ℃延伸5 min。扩增产物电泳、拍照同前。
1.4 临床资料收集收集144例患者的临床信息,如人口学信息(性别、年龄),基础疾病(糖尿病史、高血压病史等),患者来源(医院感染者或社区感染者),感染来源(原发性菌血症,或继发于肺炎、尿路感染等),感染前情况(是否使用激素或免疫抑制剂,是否接受过放疗或化疗,是否做过手术),治疗情况,住院时间及预后(好转、放弃治疗或死亡)等。并比较ST131感染者与非ST131感染者的临床特征有无差异。
1.5 药物敏感性试验采用Vitek 2 compact细菌自动鉴定及药敏分析仪检测细菌对氨苄西林、哌拉西林/他唑巴坦、头孢唑林、头孢曲松、头孢他啶、头孢吡肟、环丙沙星、左氧氟沙星、庆大霉素、亚胺培南、厄他培南、阿米卡星、氨曲南和复方新诺明等14种药物的敏感性。药敏结果依照2016年CLSI的标准[18]判读。产ESBLs确认试验依据CLSI [18]推荐的纸片法,用头孢他啶(30 µg/片)和头孢他啶加克拉维酸(30 µg/10 µg)以及头孢噻肟(30 µg/片)和头孢噻肟加克拉维酸(30 µg/10 µg),分别测量两种纸片单独和加克拉维酸的抑菌圈直径,任何一种加克拉维酸较不加克拉维酸的抑菌圈直径增加≥5 mm可确认为产ESBLs菌株。多重耐药(MDR)的标准为对3类或3类以上药物耐药[19]。并比较ST131菌株与非ST131菌株耐药性有无差异。
1.6 统计学分析数据采用SPSS 19.0软件进行统计分析,构成比或率的比较用χ2检验或Fisher确切概率计算法,正态分布的计量资料采用均数±标准差表示,两组间比较用两独立样本的t检验;非正态分布的计量资料采用中位数,四分位间距(Median,IQR)表示,两组间比较采用非参数Mann-Whitney U检验,P < 0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 系统发育分群结果在144株大肠埃希菌菌株中(表 3),可见B2群菌株占最大比例41.0%(59/144),其次分别为F群、B1群和E群,分别占16.7%(24/144)、13.9%(20/144)和13.2%(19/ 144)。
![]() |
表 3 2016年湘雅医院血流感染分离大肠埃希菌分群情况 Tab.3 Phylogenetic grouping of E. coli isolates from patients with bloodstream infections in Xiangya Hospital in 2016 (n=144) |
PCR结果显示144株大肠埃希菌菌株中,共有9株(6.3%)属于ST131型,都为系统发育B2群。对这9株ST131菌株进一步进行O血清学分型,显示其包括8株(88.9%)O25b-B2-ST131和1株(11.1%)O16-B2-ST131。
2.3 ST131感染者与非ST131感染者临床特征比较在9例ST131感染者中,男性6例,女性3例,年龄0~70岁,平均42岁。患者的科室分布移植科3例,肿瘤科1例,胰胆外科1例,感染科1例,产科1例,新生儿科1例,急诊科1例。医院感染患者有7例,占77.8%。8例(88.9%)患者有基础疾病,其中4例含有2种及以上基础疾病,4例患者有肾脏疾病,包括肾移植术后2例,肾脓肿1例,肾积水1例。有3例患者是手术后感染,2例患者1月内接受过化疗。7例(77.8%)患者使用2种及以上抗菌药物治疗。有1例患者预后差,最终死亡,其余8例患者均好转出院。与非ST131患者相比,二者临床特征并无明显差异(表 4)。
![]() |
表 4 ST131感染者与非ST131感染者临床特征比较 Tab.4 Comparison of clinical characteristics between patients with ST131 and non-ST131 infections |
ST131型菌株对氨苄西林、头孢唑林、头孢曲松、环丙沙星、左氧氟沙星、庆大霉素以及复方新诺明耐药率>50%,ESBLs阳性率达77.8%,多重耐药率高达88.9%,并高于非ST131型菌株,但差异并无统计学意义(表 5)。
![]() |
表 5 血液分离ST131与非ST131型菌株的耐药性比较 Tab.5 Comparison of antimicrobial resistance between ST131 and non-ST131 isoaltes from patients with E. coli bacteremia |
在全球范围内,肠外致病性大肠埃希菌是导致尿路感染、血流感染和脑膜炎的主要原因[20]。肠外致病性大肠埃希菌进入血流后诱发强烈的宿主炎症应答,从而引起败血症,导致血流感染的高发病率和死亡率[21]。大肠埃希菌ST131型被认为是主要的肠外致病性大肠埃希菌[22-23]。本研究结果显示,在血流感染的大肠埃希菌中ST131型别占6.3%,低于国内外的报道[3-7],提示ST131还未在本地区血流感染中形成大规模流行,可能存在其他引起血流感染的优势克隆型,需进一步检测。
已有研究认为O25b:H4是ST131菌株最主要的血清型[22, 24],而最近在少数几个国家发现的O16:H5血清型,仅占ST131菌株的一小部分比例[12, 25-26]。然而在全球有关血流感染大肠埃希菌的研究中,仅有Ciesielczuk等[13]在2015年研究发现,在英国血液和尿液中分离的143株ST131菌株中检出12株O16-ST131,但其并未区分具体标本来源。本研究结果显示,9株ST131型菌株包括8株O25b-B2-ST131和1株O16-B2-ST131,因此,本研究系国内首次发现血流感染中存在O16-ST131菌株,但菌株数量太少,为研究其分子流行特征需扩大样本量进一步筛查。
国外有研究认为大肠埃希菌菌株起源与系统发育群有关,同一个系统发育群的菌株可能存在共同的祖先,不同系统发育群致病力亦不相同[12, 27]。Wang等[5]研究发现血流感染中大肠埃希菌主要是B2群,其次是D群、B1群和A群。本研究结果显示,引起血流感染的大肠埃希菌主要为B2群,而F群菌株数量仅次于B2群,与Wang等[5]报道并不一致,原因可能是本研究采用最新的分群方法[16],更加细分出F群,目前采用这种新方法进行血流感染大肠埃希菌分群的文献报道罕见,关于F群菌株的特征有待进一步研究。
国外有研究[28-29]发现ST131感染多来源于社区感染,但Cho等[3]研究也发现ST131血流感染的患者中有67.6%的感染者来自医院感染,而本研究结果显示ST131感染以医院感染为主,与Cho等[3]报道一致。Chung等[30]研究发现ST131感染者比非ST131感染者更易继发于尿路感染,本研究结果显示,ST131感染者的人口特征和临床特征与非ST131感染者相似,ST131感染者尿路感染比例比非ST131感染者高,但差异并无统计学意义,与Cho等[3]报道一致。虽然已有的文献[30-31]报道ST131具有更多的毒力因子,但本研究结果显示ST131感染者的预后并不比非ST131感染者预后差。
药敏结果显示,血液分离大肠埃希菌ST131菌株对头孢唑林、头孢曲松、环丙沙星、左氧氟沙星、庆大霉素以及复方新诺明耐药率较高,ESBLs阳性率与多重耐药率均较高,结果与国内外相关报道[5, 32]相似,虽高于非ST131型菌株,但差异并无统计学意义,与Chung等[30]报道一致。本研究中ST131对环丙沙星耐药率为77.8%,Cho等[3]报道韩国血流感染中ST131菌株对环丙沙星耐药率高达94.1%,可能是由于地理位置不同及各地用药习惯差异所致。对哌拉西林/他唑巴坦、亚胺培南、厄他培南、阿米卡星耐药率较低,提示对于ST131引起的血流感染可优先选择这类药物进行经验性治疗。
综上所述,本地区血液分离大肠埃希菌中,B2群和F群为最常见系统分群,ST131型菌株检出率较低,国内首次在血流感染中分离出O16-ST131菌株,ST131感染者的临床特征与非ST131感染者相似,ST131型菌株多重耐药率及ESBLs阳性率高,应引起重视。
[1] |
吕媛, 李耘, 薛峰, 等. 卫生部全国细菌耐药监测网(Mohnarin) 2011-2012年度血流感染细菌耐药监测报告[J].
中国临床药理学杂志, 2014, 30(3): 278-88.
|
[2] |
Nicolas-Chanoine MH, Blanco J, Leflon-Guibout V, et al. Intercontinental emergence of Escherichia coli clone O25:H4- ST131 producing CTX-M-15[J].
J Antimicrob Chemother, 2008, 61(2): 273-81.
|
[3] |
Cho SY, Kang CI, Cha MK, et al. Clinical features and treatment outcomes of bloodstream infections caused by extended-spectrum β-Lactamase-producing Escherichia coli sequence type 131[J].
Microb Drug Resist, 2015, 21(4): 463-9.
DOI: 10.1089/mdr.2014.0261. |
[4] |
Can F, Kurt-Azap O, Nurtop E, et al. Molecular epidemiology of bloodstream-associated Escherichia coli ST131 H30-Rx subclone infection in a region with high quinolone resistance[J].
J Med Microbiol, 2016, 65(4): 306-10.
DOI: 10.1099/jmm.0.000224. |
[5] |
Wang S, Zhao SY, Xiao SZ, et al. Antimicrobial resistance and molecular epidemiology of Escherichia coli causing bloodstream infections in three hospitals in Shanghai, China[J].
PLoS One, 2016, 11(1): e0147740.
DOI: 10.1371/journal.pone.0147740. |
[6] |
Zhao SY, Wang YC, Xiao SZ, et al. Drug susceptibility and molecular epidemiology of Escherichia coli in bloodstream infections in Shanghai, China, 2011-2013[J].
Infect Dis (Lond), 2015, 47(5): 310-8.
DOI: 10.3109/00365548.2014.990509. |
[7] |
董敏.血流感染和尿路感染的大肠埃希菌的分子流行病学研究[D].杭州: 浙江大学, 2015.
|
[8] |
Torres E, López-Cerero L, Morales I, et al. Prevalence and transmission dynamics of Escherichia coli ST131 among contacts of infected community and hospitalized patients[J].
Clin Microbiol Infect, 2018, 24(6): 618-23.
DOI: 10.1016/j.cmi.2017.09.007. |
[9] |
Cheng MF, Chen WL, Hung WY, et al. Emergence of extended spectrum-β-lactamase-producing Escherichia coli O25b-ST131:a major community-acquired uropathogen in infants[J].
Pediatr Infect Dis J, 2015, 34(5): 469-75.
DOI: 10.1097/INF.0000000000000623. |
[10] |
Hefzy EM, Hassuna NA. Fluoroquinolone-resistant sequence type 131 subgroups O25b and O16 among extraintestinal Escherichia coli isolates from community-acquired urinary tract infections[J].
Microb Drug Resist, 2017, 23(2): 224-9.
DOI: 10.1089/mdr.2016.0040. |
[11] |
Hojabri Z, Mirmohammadkhani M, Kamali F, et al. Molecular epidemiology of Escherichia coli sequence type 131 and its H30/ H30-Rx subclones recovered from extra-intestinal infections:first report of OXA-48 producing ST131 clone from Iran[J].
Eur J Clin Microbiol Infect Dis, 2017, 36(10): 1859-66.
DOI: 10.1007/s10096-017-3021-9. |
[12] |
钟一鸣.健康人群肠道产CTX-M型ESBLs大肠埃希菌的分子流行病学研究[D].长沙: 中南大学, 2015.
|
[13] |
Ciesielczuk H, Doumith M, Hope R, et al. Characterization of the extra-intestinal pathogenic Escherichia coli ST131 clone among isolates recovered from urinary and bloodstream infections in the United Kingdom[J].
J Med Microbiol, 2015, 64(12): 1496-503.
DOI: 10.1099/jmm.0.000179. |
[14] |
Wu YH, Cheng MF, Lai CH, et al. The role of Sequence Type (ST) 131 in adult community-onset non-ESBL-producing Escherichia coli bacteraemia[J].
BMC Infect Dis, 2014, 14: 579.
DOI: 10.1186/s12879-014-0579-z. |
[15] |
Vlieghe ER, Huang TD, Phe T, et al. Prevalence and distribution of beta-lactamase coding genes in third-generation cephalosporinresistant enterobacteriaceae from bloodstream infections in cambodia[J].
Eur J Clin Microbiol Infect Dis, 2015, 34(6): 1223-9.
DOI: 10.1007/s10096-015-2350-9. |
[16] |
Clermont O, Christenson JK, Denamur E, et al. The clermont Escherichia coli phylo-typing method revisited:improvement of specificity and detection of new phylo-groups[J].
Environ Microbiol Rep, 2013, 5(1): 58-65.
DOI: 10.1111/emi4.2013.5.issue-1. |
[17] |
Johnson JR, Clermont O, Johnston B, et al. Rapid and specific detection, molecular epidemiology, and experimental virulence of the O16 subgroup within Escherichia coli sequence type 131[J].
J Clin Microbiol, 2014, 52(5): 1358-65.
DOI: 10.1128/JCM.03502-13. |
[18] |
Clinical, Laboratory Standards Institute.Performance standards for antimicrobial susceptibility testing: twenty-third informational supplement M100-S26[Z], 2016.
|
[19] |
Magiorakos AP, Srinivasan A, Carey RB, et al. Multidrug-resistant, extensively drug-resistant and pandrug-resistant bacteria:an international expert proposal for interim standard definitions for acquired resistance[J].
Clin Microbiol Infect, 2012, 18(3): 268-81.
DOI: 10.1111/j.1469-0691.2011.03570.x. |
[20] |
Ciesielczuk H, Betts J, Phee L, et al. Comparative virulence of urinary and bloodstream isolates of extra-intestinal pathogenic Escherichia coli in a Galleria mellonella model[J].
Virulence, 2015, 6(2): 145-51.
DOI: 10.4161/21505594.2014.988095. |
[21] |
Laupland KB, Gregson DB, Church DL, et al. Incidence, risk factors and outcomes of Escherichia coli bloodstream infections in a large canadian region[J].
Clin Microbiol Infect, 2008, 14(11): 1041-7.
DOI: 10.1111/j.1469-0691.2008.02089.x. |
[22] |
Nicolas-Chanoine MH, Bertrand X, Madec JY. Escherichia coli ST131, an intriguing clonal group[J].
Clin Microbiol Rev, 2014, 27(3): 543-74.
DOI: 10.1128/CMR.00125-13. |
[23] |
Zhong YM, Liu WE, Liang XH, et al. Emergence and spread of O16-ST131 and O25b-ST131 clones among faecal CTX-Mproducing Escherichia coli in healthy individuals in Hunan Province, China[J].
J Antimicrob Chemother, 2015, 70(8): 2223-7.
DOI: 10.1093/jac/dkv114. |
[24] |
Banerjee R, Johnson JR. A new clone sweeps clean:the enigmatic emergence of Escherichia coli sequence type 131[J].
Antimicrob Agents Chemother, 2014, 58(9): 4997-5004.
DOI: 10.1128/AAC.02824-14. |
[25] |
Dahbi G, Mora A, López C, et al. Emergence of new variants of ST131 clonal group among extraintestinal pathogenic Escherichia coli producing extended-spectrum β-lactamases[J].
Int J Antimicrob Agents, 2013, 42(4): 347-51.
DOI: 10.1016/j.ijantimicag.2013.06.017. |
[26] |
Blanc V, Leflon-Guibout V, Blanco J, et al. Prevalence of day-care centre children (France) with faecal CTX-M-producing Escherichia coli comprising O25b:H4 and O16:H5 ST131 strains[J].
J Antimicrob Chemother, 2014, 69(5): 1231-7.
DOI: 10.1093/jac/dkt519. |
[27] |
Johnson JR, Kuskowski MA, O'bryan TT, et al. Epidemiological correlates of virulence genotype and phylogenetic background among Escherichia coli blood isolates from adults with diversesource bacteremia[J].
J Infect Dis, 2002, 185(10): 1439-47.
DOI: 10.1086/jid.2002.185.issue-10. |
[28] |
Rogers BA, Sidjabat HE, Paterson DL. Escherichia coli O25bST131:a pandemic, multiresistant, community-associated strain[J].
J Antimicrob Chemother, 2011, 66(1): 1-14.
DOI: 10.1093/jac/dkq415. |
[29] |
Kim H, Kim YA, Park YS, et al. Risk factors and molecular features of sequence type (ST)131 extended-spectrum β-Lactamaseproducing Escherichia coli in community-onset bacteremia[J].
Sci Rep, 2017, 7(1): 14640.
DOI: 10.1038/s41598-017-14621-4. |
[30] |
Chung HC, Lai CH, Lin JN, et al. Bacteremia caused by extendedspectrum-β-lactamase-producing Escherichia coli sequence type ST131 and non-ST131 clones:comparison of demographic data, clinical features, and mortality[J].
Antimicrob Agents Chemother, 2012, 56(2): 618-22.
DOI: 10.1128/AAC.05753-11. |
[31] |
Kondratyeva K, Wollman A, Gerlitz G, et al. Adhesion and invasion to epithelial cells and motility of extended-spectrum β-lactamaseproducing Escherichia coli reveal ST131 superiority:a comparative in vitro study of extraintestinal pathogenic E.coli lineages[J].
J Med Microbiol, 2017, 66(9): 1350-7.
DOI: 10.1099/jmm.0.000549. |
[32] |
Morales-Barroso I, López-Cerero L, Molina J, et al. Bacteraemia due to non-ESBL-producing Escherichia coli O25b:H4 sequence type 131:insights into risk factors, clinical features and outcomes[J].
Int J Antimicrob Agents, 2017, 49(4): 498-502.
DOI: 10.1016/j.ijantimicag.2016.12.013. |