文章快速检索     高级检索
  南方医科大学学报  2018, Vol. 38Issue (8): 943-948  DOI: 10.3969/j.issn.1673-4254.2018.08.07.
0

引用本文 [复制中英文]

王进, 董晓强, 朱新国, 赵华, 毛德利, 赵鑫. IL-9在结肠癌组织中的表达及其临床意义[J]. 南方医科大学学报, 2018, 38(8): 943-948. DOI: 10.3969/j.issn.1673-4254.2018.08.07.
WANG Jin, DONG Xiaoqiang, ZHU Xinguo, ZHAO Hua, MAO Deli, ZHAO Xin. Expression of interleukin-9 in colon cancer tissues and its clinical significance[J]. Journal of Southern Medical University, 2018, 38(8): 943-948. DOI: 10.3969/j.issn.1673-4254.2018.08.07.

基金项目

国家自然科学基金(31770985,81302146);中国博士后基金(2016M591913);江苏省自然科学基金(BK20161225);江苏省卫生计生委科研课题(H201620);苏州市科技计划(SYS201539);江苏省青年医学人才(QNRC2016732);江苏省“六大人才高峰”计划资助项目(2016-WSW-043)

作者简介

王进,硕士,E-mail: wjjim1991@163.com

通信作者

赵鑫,副主任医师,副教授,硕士研究生导师,E-mail:zhaox@suda.edu.cn

文章历史

收稿日期:2018-04-01
IL-9在结肠癌组织中的表达及其临床意义
王进 , 董晓强 , 朱新国 , 赵华 , 毛德利 , 赵鑫     
苏州大学附属第一医院普外科,江苏 苏州 215006
摘要: 目的 探讨IL-9在结肠癌组织中的表达水平及其临床意义。方法 采用免疫组化法和实时荧光定量PCR(qRT-PCR)法分别检测92例结肠癌组织及相应癌旁正常组织中IL-9的表达情况;统计分析IL-9在结肠癌与癌旁正常组织中的表达差异;分析IL-9蛋白表达与结肠癌患者的临床病理特征及生存预后之间的关系。结果 在癌旁正常组织中IL-9蛋白及mRNA的表达水平均显著高于结肠癌组织(P < 0.001)。IL-9蛋白表达水平与结肠癌患者的TNM分期、Ducks分期及淋巴结转移相关(P=0.013, 0.025, 0.004),而与性别、年龄、肿瘤大小、分化程度及肝转移等临床病理特征无明显相关性(P > 0.05)。IL-9表达阳性结肠癌患者的生存时间明显长于阴性表达的患者(P=0.015)。结论 IL-9在结肠癌组织中较在癌旁正常组织中低表达;IL-9在结肠癌组织中的表达与TNM分期、Ducks分期及淋巴结转移呈负相关,与良好预后呈正相关,提示在结肠癌肿瘤微环境中IL-9发挥了重要的作用。
关键词: IL-9    结肠癌    免疫组化    预后    
Expression of interleukin-9 in colon cancer tissues and its clinical significance
WANG Jin, DONG Xiaoqiang, ZHU Xinguo, ZHAO Hua, MAO Deli, ZHAO Xin     
Department of General Surgery, First Affiliated Hospital of Soochow University, Suzhou 215006, China
Supported by National Natural Science Foundation of China (31770985, 81302146)
Abstract: Objective To investigate the expression of interleukin-9 (IL-9) in colon cancer tissues and its clinical significance. Methods Immunohistochenmistry and qRT-PCR were used to detect the expressions of IL-9 protein and mRNA in 92 colon cancer tissues and paired adjacent normal tissues. The correlation of IL-9 expressions with the clinicopathological features and prognosis of the patients was analyzed. Results IL-9 protein and mRNA expressions were significantly higher in adjacent normal tissues than in the colon cancer tissues (P < 0.001). In colon cancer patients, IL-9 expression was significantly correlated with TNM stage (P=0.013), Ducks stage (P=0.025) and lymph node metastasis (P=0.004) but not with gender, age, tumor size, differentiation or hepatic metastasis (P > 0.05). The survival time of colon cancer patients with positive IL-9 expression was significantly longer than that of patients negative for IL-9 expression (P=0.015). Conclusions IL-9 expression is lowered in colon cancer tissues compoved with in the adjacent normal tissues. IL-9 expression is negatively correlated with TNM staging, Ducks staging and lymph node metastasis but positively with good prognosis, suggesting its important role in the tumor microenvironment of colon cancer.
Keywords: interleukin-9    colon cancer    immunohistochemistry    prog    

结肠癌是消化系统最常见的恶性肿瘤之一,其发病率在全球居第3位[1]。随着生活质量的提高及饮食习惯的改变,近年来结肠癌的发病率及死亡率呈现上升趋势[2-3],据统计,其5年生存率仅约50%[4]。手术、放疗、化疗、分子靶向治疗等是目前治疗结肠癌的主要方式,而肿瘤免疫治疗有望成为新的治疗手段[5-6]

近来研究发现,细胞因子中的白细胞介素-9(IL-9)具有强大的抗肿瘤作用[7],如IL-9可明显降低小鼠黑色素瘤的增长速度,且可减少肺转移灶数量[8, 22-23];IL-9亦可抑制小鼠鳞癌的生长[9];此外,IL-9可促进CTL细胞抗原的启动并进入肺癌组织发挥抗肿瘤作用[10]。IL-9在结肠癌患者的血浆及癌组织中低表达,且与结肠癌进展相关[11]。对于IL-9的表达与结肠癌患者的临床病理特征及生存时间之间的关系,尚未有进一步研究。本研究通过免疫组织化学SP法及实时荧光定量PCR(qRT-PCR)法检测IL-9在结肠癌组织及相应癌旁正常组织中的表达水平,探讨其与结肠癌临床病理特征及预后之间的关系。

1 资料和方法 1.1 一般资料

收集2010年1月~2010年12月苏州大学附属第一医院行手术切除的92例结肠癌组织标本及相应的癌旁正常组织标本(距肿瘤边缘5 cm以上,经术后病理证实无癌组织侵犯的结肠组织),所有组织标本留存两份:其中1份予以10%甲醛溶液(福尔马林溶液)固定,石蜡包埋、切片存档;另一份-80 ℃冰箱冻存,备抽提RNA。同时收集该92例患者完整的临床资料。所有患者均无自身免疫性疾病及结核、肝炎、艾滋病等传染病史,术前均未行放、化疗、靶向治疗及免疫治疗,术后病理均确诊为结肠癌。其中男性53例,女性39例;年龄46~91岁,平均年龄70.1岁;肿瘤直径≤3 cm 17例,> 3 cm 75例;低或中分化癌69例,高分化癌23例;根据第7版美国癌症联合委员会(AJCC)/国际抗癌联盟(UICC)结直肠癌TNM分期标准:Ⅰ~Ⅱ期44例,Ⅲ~Ⅳ期48例;根据Ducks分期标准:A~B期51例,C~D期41例;有淋巴结转移45例,无淋巴结转移47例;有肝转移6例,无肝转移86例。

1.2 免疫组织化学法 1.2.1 免疫组化SP法检测IL-9的表达及分布

石蜡切片,脱蜡水化,PBS洗片,柠檬酸缓冲液冲洗;3%的H2O2滴于组织切片,室温下放置灭活内源性过氧化物酶10 min,PBS再次洗片,去除PBS并滴加5% BSA 50 μL,室温孵育10 min;滴加IL-9一抗(1:200稀释)4 ℃过夜,PBS洗片;加二抗室温60 min静置,PBS再次洗片;DAB显色剂反应5 min,苏木精复染,梯度浓度乙醇脱水,中性树脂封片观察。IL-9抗体购于Abcam。

1.2.2 结果判定标准

IL-9主要表达于细胞质,遂以细胞质出现淡黄色、棕黄色或棕褐色颗粒为阳性。随机观察10个200倍镜视野,按阳性细胞所占比例计分:< 5%为0分,5%~30%为1分,31%~60%为2分,> 60%为3分;按染色强度计分:无色为0分,淡黄色为1分,棕黄色为2分,棕褐色为3分。将阳性染色细胞比例与染色强度相乘:< 2分为IL-9表达阴性(-),≥2分为IL-9表达阳性(+)。

1.3 实时荧光定量PCR法 1.3.1 Trizol法抽提结肠癌组织及癌旁组织中的总RNA

加1 mL Trizol研磨组织标本至均质,转至1.5 mL无酶EP管并加入氯仿离心后,取上清液加入等体积异丙嗪,离心后弃上清液,加入75%乙醇,待酒精完全挥发后加入RNase-Free H2O2溶解RNA,适当稀释后用紫外分光光度计测定RNA A260 nmA280 nm,判断RNA纯度,并调整样本RNA终浓度至同一水平。

1.3.2 逆转录反应

使用Prime Script RT Master试剂盒,计算反应体系所需试剂剂量,加样后行逆转录反应,反应程序:37 ℃ 15 min,85 ℃ 15 s,4 ℃ 1 min,最终RNA逆转录成cDNA。

1.3.3 检测IL-9 mRNA的表达水平

以甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)为内参,反应程序:95 ℃ 5 min,95 ℃ 10 s,60 ℃ 30 s,共40个循环,进行PCR扩增。根据仪器自动计算所得每组标本的Ct值,计算目的基因mRNA的相对表达量2-ΔΔCt,△△Ct=实验组△Ct-对照组△Ct,△Ct=目的基因Ct值-内参Ct值。引物序列如下:IL-9: F: 5'-CTCTGTTTGGGCATTCCCTCT-3',R: 5'-GGGTATCTTGTTTGCATGGTGG-3';GAPDH F: 5'-TGTGGGCATCAATGGATTTGG-3',R:5'-ACACCATGTATTCCGGGTCAAT-3'。

1.4 随访方法

随访时间为6~72月,截止至2016年12月1日。生存时间为患者手术当日至随访截止日期或至患者死亡日期;术后2年内每3月随访1次,术后2~5年每半年随访1次,术后5年以上每1年随访1次;随访通过电话、复诊等方式进行。

1.5 统计学方法

应用SPSS 19.0统计软件进行分析,计数资料采用率表示,不同组间的比较采用卡方检验,正态分布的计量资料用均数±标准差表示,组间比较采用t检验,应用GraphPad Prism 7.0统计软件绘制生存曲线,并采用Kaplan-Meier及Log-rank检验进行生存分析,P < 0.05为差异具有统计学意义。

2 结果 2.1 IL-9在结肠癌组织及癌旁组织中的表达

免疫组织化学染色结果显示:结肠癌组织中IL-9阴性表达58例,阳性表达34例,阳性率为37.0%(34/92);癌旁组织中IL-9阴性表达21例,阳性表达71例,阳性率为77.2%(71/92)。结肠癌组织中IL-9的阳性表达率明显低于癌旁正常组织,且差异具有统计学意义(P < 0.001,图 1表 1)。

图 1 结肠癌组织和癌旁正常组织中IL-9蛋白的表达 Figure 1 Expression of IL-9 protein in colon cancer tissues and adjacent normal tissues (SP×100). A: Negative expression of IL-9 in colon cancer tissues; B: Positive expression of IL-9 in colon cancer tissues; C: Negative expression of IL-9 in adjacent normal tissues; D: Positive expression of IL-9 in adjacent normal tissues.
表 1 IL-9在结肠癌组织及癌旁正常组织中的表达 Table 1 Expression of IL-9 in colon cancer tissues and adjacent normal tissues (n=92)
2.2 qRT-PCR检测结肠癌组织及癌旁组织中IL-9 mRNA的表达

设癌旁组织IL-9 mRNA表达量均值为1。则癌旁正常组织IL-9 mRNA相对表达量(1.00±0.13)与结肠癌组织(0.32±0.09)相比,癌旁正常组织中IL-9 mRNA的表达显著高于结肠癌组织,差异具有统计学意义(P < 0.001,图 2)。

图 2 结肠癌组织及癌旁正常组织中IL-9 mRNA的表达 Figure 2 Relative mRNA expression levels of IL-9 in colon cancer tissues and adjacent normal tissues. ***P < 0.001.
2.3 IL-9的表达与结肠癌临床病理特征之间的关系

结肠癌组织中IL-9的表达与肿瘤TNM分期、Ducks分期和淋巴结转移有相关性,且呈负相关:结肠癌Ⅰ~Ⅱ期、Ⅲ~Ⅳ期IL-9的阳性表达率分别为50.0%、25.0%;结肠癌A~B期、C~D期IL-9的阳性表达率分别为47.1%、24.4%,结肠癌TNM分期、Ducks分期越晚,IL-9的阳性表达率越低,差异均具有统计学意义(P < 0.05);有淋巴结转移组IL-9的阳性表达率(22.2%)明显低于无淋巴结转移组(51.1%),差异具有统计学意义(P < 0.05)。结肠癌组织中IL-9的表达与性别、年龄、肿瘤大小、分化程度及肝转移等临床病理特征无明显相关性(P > 0.05,表 2)。

表 2 IL-9的表达与结肠癌临床病理特征的关系 Table 2 Associations between IL-9 expression and clinicopathological parameters of colon cancer patients
2.4 结肠癌组织中IL-9的表达与临床预后之间的关系

随访时间为6~72月,中位数为68月,随访率93.3%。92例结肠癌患者的5年总体生存率为57.6%(53/92)。IL-9表达阴性的结肠癌患者(58例)的1、3、5年生存率分别为94.8%、74.1%、53.4%;IL-9表达阳性的结肠癌患者(34例)的1、3、5年生存率分别为100.0%、91.2%、76.5%。单因素生存分析显示,与IL-9表达阴性的结肠癌患者相比,IL-9表达阳性患者的术后生存时间更长,且差异具有统计学意义(P < 0.05,图 2)。

3 讨论

白细胞介素在抗肿瘤免疫应答中的作用日益受到关注[12-13]。IL-9主要来源于活化的Th9细胞,嗜酸性粒细胞、中性粒细胞及肥大细胞等也可分泌产生,而肿瘤实质细胞不能表达IL-9;IL-9受体由2条链构成,分别为α链(IL-9Rα)和γ链(IL-9Rγ);IL-9与其受体结合后,可激发JAK1、JAK3交叉磷酸化,从而激活STAT1、STAT3、STAT5形成同源及异源二聚体,进入细胞核内启动相关基因转录表达,发挥相应的生物学作用[14-17]。IL-9的效应细胞为肥大细胞、T细胞亚群、抗原提呈细胞及树突状细胞等[18],这就决定了IL-9作用的多样性。IL-9具有促进炎症反应及自身免疫性疾病,抗寄生虫及抗结核等作用[19-20],近年的研究发现IL-9具有抗肿瘤免疫作用[21]

本研究发现,在结肠癌组织中IL-9蛋白及mRNA的表达均明显高于癌旁正常组织。近来关于IL-9的抗肿瘤作用日益受到关注。IL-9可抑制小鼠皮下黑色素瘤的生长速度及获得较长生存时间[22];Lu等[10, 23]建立小鼠肺黑色素瘤模型发现IL-9可抑制小鼠肺转移灶数量;通过IL-9激发树突状细胞(DC)的功能来提高肿瘤特异性细胞毒T淋巴细胞(CTL)的抗肿瘤免疫[24];IL-9可抑制小鼠鳞状上皮细胞癌[9];建立Th9抗原特异性疫苗发现IL-9可抑制肿瘤细胞的种植以及扩散[25]。本研究探讨了IL-9在结肠癌和癌旁组织的表达以及IL-9在结肠癌组织的表达与患者临床病理特征的关系,研究结果与上述结论一致,说明IL-9在恶性肿瘤中可能发挥了抗肿瘤免疫作用。其原因可能为肠道是人体重要的免疫屏障,结肠组织中存在数量及种类较多的免疫细胞,这些细胞分泌了较多的细胞因子,而肿瘤组织微环境中以肿瘤细胞为主,且免疫效应细胞处于免疫抑制状态,浸润的免疫细胞较少,因此分泌细胞因子IL-9较少。

本研究还发现IL-9在结肠癌组织中的表达与TNM分期密切相关,分期越晚IL-9的阳性表达率越低,这与Huang等[11]研究发现Ⅲ~Ⅳ期结肠癌组织中IL-9的表达低于Ⅰ~Ⅱ期的结果一致,但该研究尚未对IL-9与其他临床病理特征及预后的关系作进一步研究。通过研究我们发现IL-9在结肠癌组织中的表达与Ducks分期、淋巴结转移呈负相关:Ducks分期越晚IL-9的阳性表达率越低,有淋巴结转移组的IL-9的阳性表达率明显低于无淋巴结转移组;IL-9的表达与性别、年龄、肿瘤大小、分化程度及肝转移等临床病理特征无明显相关性,提示结肠癌肿瘤微环境中高表达IL-9可能在抑制结肠癌的进展中发挥了重要作用。除此之外,通过生存分析我们还发现IL-9表达阳性的结肠癌患者的术后生存时间明显比IL-9表达阴性的患者长,提示IL-9的表达水平可评估结肠癌患者的预后情况。以上结果提示:IL-9可能具有较强的抗肿瘤作用;对结肠癌细胞有较强免疫反应的个体,可能通过在肿瘤微环境中聚集相应的抗肿瘤免疫细胞,分泌IL-9产生抗肿瘤免疫作用,抑制肿瘤细胞的局部侵犯和远处转移,所以预后较好。

关于IL-9激发抗肿瘤免疫反应的机制,已有一些研究进行了探索。在小鼠黑色素瘤中IL-9通过上调抗增值分子p21和凋亡分子TRAIL促进黑色素瘤细胞的凋亡[26];IL-9作用于效应细胞肥大细胞,激发固有免疫反应,发挥抗肿瘤作用[22, 25, 27];IL-9通过诱导肺癌组织CCL20-CCR6依赖的DCs细胞进入引流淋巴结,激活CTL细胞后引入肿瘤组织发挥抗肿瘤作用,同时刺激CD8+细胞介导的抗肿瘤免疫[10, 23];在小鼠鳞癌中金黄色葡萄球菌肠毒素B增加CD4+细胞信号转导及IL-9转录因子STAT5、HDAC1、PU.1的表达,促进IL-9产生,从而抑制鳞癌细胞生长[9]。SIRT1对诱导IL-9分泌具有重要作用,其上游抑制信号为TAK1,SIRT1缺陷可活化和诱导下游信号mTOR-HIF1 α,促进IL-9的分泌从而抑制肿瘤进展[8, 28];GITR可通过转录因子STAT6和组蛋白乙酰化酶P300促进IL-9分泌[29];通过DCs表达的OX40及NF-κB信号通路可调节IL-9的产生[30]。但目前对于IL-9的抗肿瘤作用机制尚未完全阐明。

综上所述,IL-9可能具有抗肿瘤免疫作用,与结肠癌的进展密切相关。因本研究为单中心研究,有待于大样本多中心研究证实;同时,IL-9在结肠癌微环境中的抗肿瘤免疫机制尚需细胞免疫学、分子生物学实验及动物实验进一步探讨,从而为结肠癌的临床免疫治疗提供新的理论基础。

参考文献
[1]
蔡国响, 戴卫星, 蔡三军. 结直肠癌多学科综合治疗的现状与未来[J]. 中华胃肠外科杂志, 2016, 19(6): 607-11. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1671-0274.2016.06.002.
[2]
Chow CJ, Al-Refaie WB, Abraham A, et al. Does patient rurality predict quality colon cancer care? A population-based study[J]. Dis Colon Rectum, 2015, 58(4): 415-22. DOI: 10.1097/DCR.0000000000000173.
[3]
宋文, 彭曼, 段世玉, 等. MIER3在结直肠癌中的表达及其相关蛋白的生物信息学分析[J]. 南方医科大学学报, 2017, 37(8): 1040-6. DOI: 10.3969/j.issn.1673-4254.2017.08.07.
[4]
Ferlay J, Soerjomataram I, Dikshit R, et al. Cancer incidence and mortality worldwide: sources, methods and major patterns in GLOBOCAN 2012[J]. Int J Cancer, 2015, 136(5): E359-86. DOI: 10.1002/ijc.29210.
[5]
Couzin-Frankel J. Breakthrough of the year 2013. Cancer immunotherapy[J]. Science, 2013, 342(6165): 1432-3. DOI: 10.1126/science.342.6165.1432.
[6]
Yang YP. Cancer immunotherapy: harnessing the immune system to battle cancer[J]. J Clin Invest, 2015, 125(9): 3335-7. DOI: 10.1172/JCI83871.
[7]
Végran F, Apetoh L, Ghiringhelli F. Th9 cells: a novel CD4 T-cell subset in the immune war against cancer[J]. Cancer Res, 2015, 75(3): 475-9. DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-14-2748.
[8]
Nakatsukasa H, Zhang D, Maruyama T, et al. The DNA-binding inhibitor Id3 regulates IL-9 production in CD4(+) T cells[J]. Nat Immunol, 2015, 16(10): 1077-84. DOI: 10.1038/ni.3252.
[9]
Miao BP, Zhang RS, Sun HJ, et al. Inhibition of squamous cancer growth in a mouse model by Staphylococcal enterotoxin B[J]. Cell Mol Immunol, 2017, 14(4): 371-9. DOI: 10.1038/cmi.2015.88.
[10]
Lu Y, Yi Q. Utilizing T9 cells as a novel therapeutic strategy for malignancies[J]. Oncoimmunology, 2013, 2(3): 23084. DOI: 10.4161/onci.23084.
[11]
Huang Y, Cao Y, Zhang S, et al. Association between low expression levels of interleukin-9 and colon cancer progression[J]. Exp Ther Med, 2015, 10(3): 942-6. DOI: 10.3892/etm.2015.2588.
[12]
Davis MR, Zhu Z, Hansen DM, et al. The role of IL-21 in immunity and cancer[J]. Cancer Lett, 2015, 358(2): 107-14. DOI: 10.1016/j.canlet.2014.12.047.
[13]
Schwartz C, O'grady K, Lavelle EC, et al. Interleukin 33: an innate alarm for adaptive responses beyond Th2 immunity-emerging roles in obesity, intestinal inflammation, and cancer[J]. Eur J Immunol, 2016, 46(5): 1091-100. DOI: 10.1002/eji.201545780.
[14]
Dardalhon V, Awasthi A, Kwon H, et al. IL-4 inhibits TGF-beta[J]. Nat Immunol, 2008, 9(12): 1347-55. DOI: 10.1038/ni.1677.
[15]
Cheng G, Yu A, Dee MJ, et al. IL-2R signaling is essential for functional maturation of regulatory T cells during thymic development[J]. J Immunol, 2013, 190(4): 1567-75. DOI: 10.4049/jimmunol.1201218.
[16]
Pan HF, Leng RX, Li XP, et al. Targeting T-helper 9 cells and interleukin-9 in autoimmune diseases[J]. Cytokine Growth Factor Rev, 2013, 24(6): 515-22. DOI: 10.1016/j.cytogfr.2013.09.001.
[17]
Ma L, Xue HB, Guan XH, et al. Possible pathogenic role of T helper type 9 cells and interleukin (IL)-9 in atopic dermatitis[J]. Clin Exp Immunol, 2014, 175(1): 25-31. DOI: 10.1111/cei.2014.175.issue-1.
[18]
Goswami R, Kaplan MH. A brief history of IL-9[J]. J Immunol, 2011, 186(6): 3283-8. DOI: 10.4049/jimmunol.1003049.
[19]
Nalleweg N, Chiriac MT, Podstawa E, et al. IL-9 and its receptor are predominantly involved in the pathogenesis of UC[J]. Gut, 2015, 64(5): 743-55. DOI: 10.1136/gutjnl-2013-305947.
[20]
Rojas-Zuleta WG, Sanchez E.. IL-9: function, sources, and detection[J]. Methods Mol Biol, 2017, 1585(8): 21-35.
[21]
许昆鹏, 赵路军. Th9细胞抗肿瘤免疫作用及机制研究进展[J]. 中国肿瘤临床, 2017, 44(6): 294-8. DOI: 10.3969/j.issn.1000-8179.2017.06.390.
[22]
Purwar R, Schlapbach C, Xiao S, et al. Robust tumor immunity to melanoma mediated by interleukin-9-producing T cells[J]. Nat Med, 2012, 18(8): 1248-53. DOI: 10.1038/nm.2856.
[23]
Lu Y, Hong S, Li H, et al. Th9 cells promote antitumor immune responses in vivo[J]. J Clin Invest, 2012, 122(11): 4160-71. DOI: 10.1172/JCI65459.
[24]
Kim IK, Kim BS, Koh CH, et al. Glucocorticoid-induced tumor necrosis factor receptor-related protein co-stimulation facilitates tumor regression by inducing IL-9-producing helper T cells[J]. Nat Med, 2015, 21(9): 1010-7. DOI: 10.1038/nm.3922.
[25]
Abdul-Wahid A, Cydzik M, Prodeus A, et al. Induction of antigen[J]. Int J Cancer, 2016, 139(4): 841-53. DOI: 10.1002/ijc.30121.
[26]
Fang Y, Chen X, Bai Q, et al. IL-9 inhibits HTB-72 melanoma cell growth through upregulation of p21 and TRAIL[J]. J Surg Oncol, 2015, 111(8): 969-74. DOI: 10.1002/jso.v111.8.
[27]
Végran F, Berger H, Boidot R, et al. The transcription factor IRF1 dictates the IL-21-dependent anticancer functions of TH9 cells[J]. Nat Immunol, 2014, 15(8): 758-66. DOI: 10.1038/ni.2925.
[28]
Wang Y, Bi Y, Chen X, et al. Histone deacetylase SIRT1 negatively regulates the differentiation of interleukin-9-Producing CD4(+) T cells[J]. Immunity, 2016, 44(6): 1337-49. DOI: 10.1016/j.immuni.2016.05.009.
[29]
Xiao X, Shi X, Fan Y, et al. GITR subverts Foxp3(+) Tregs to boost Th9 immunity through regulation of histone acetylation[J]. Nat Commun, 2015, 6(12): 8266.
[30]
Zhao Y, Chu X, Chen J, et al. Dectin-1-activated dendritic cells trigger potent antitumour immunity through the induction of Th9 cells[J]. Nat Commun, 2016, 7(7): 12368.