根据最新的国内肿瘤调查数据, 肺癌仍是国内发病率最高的恶性肿瘤[1]。虽然目前肺癌治疗的手段增多、临床疗效明显提高, 但因其高转移性导致病人生存期和预后仍不理想[2-3]。因此, 进一步探讨肺癌转移的机制, 是目前肺癌研究的重点。脂肪酸转运蛋白4 (FABP4)是细胞内脂肪酸代谢的重要蛋白[4-5], 新近的研究发现其还可促进宫颈癌[6]、肝癌[7]等细胞增殖、转移。研究还发现, 其表达水平和肺癌的预后相关[8], 但其与肺癌细胞转移的关系目前鲜有报道。miRNA是调控细胞内蛋白表达的重要因子[9-10], miRNA是否通过调控FABP4表达影响肺癌的转移, 目前尚未见报道。因此, 本研究皆指在探讨FABP4对肺癌细胞转移能力的影响并研究靶向FABP4的miRNA。
1 材料和方法 1.1 材料FABP4兔来源多克隆一抗(CST, 美国), β-actin鼠来源单克隆一抗(CST, 美国), 抗兔或鼠HRP标记二抗(中杉金桥, 北京), 胰蛋白酶(吉诺公司, 中国), 高糖型DMEM、胎牛血清(Gibco, 美国), Transwell小室(Corning, 美国), 新霉素和嘌呤霉素(Sigma, 美国), Trizol试剂(Invitrogen, 美国); SYBR Green Real-time PCR Master Mix (Roche, 美国)。
1.2 细胞培养肺癌细胞株L9981、A549、PC13、NL9980、H661和95C由本实验室保存细胞。用含10%胎牛血清的DMEM培养基, 在5% CO2的37 ℃孵箱中培养。
1.3 shRNA质粒转染shRNA质粒由上海吉玛生物公司合成。质粒系列参考Wang等[11]的报道, shFABP4-1 sense, 5'-CACGAGA GAUUUAUGAGAdTdT-3'和antisense, 5'-UCUCUCA UAAACUCUCGUGdTdT-3'; shFABP4-2 sense, 5'-GC AUGGCCAAACCUAACAUTdT-3'和antisense, 5'-AU GUUAGGUUUGGCCAUGCdTdT-3'; shFABP4-3 sense, 5'-GGGAACCUUUCCACACUAUTT-3'和antisense, 5'-AUAGUGUGGAAAGGUUCCCTT-3'; NC sense, 5'-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT-3'和antisense, 5'-ACGUGACACGUUCGGAGAATT-3。' NL9980细胞转染按lip-2000的说明书进行。转染48 h, 与新霉素0.15 μg/mL筛选, 直至荧光显微镜下95%以上的细胞有荧光, Western blot检测蛋白水平。
1.4 慢病毒转染过表达FABP4蛋白的慢病毒由上海和元生物公司合成。按慢病毒滴度和细胞比1:25进行转染A549细胞, 48 h后给予嘌呤霉素(500 ng/mL)筛选, 直至荧光显微镜下95%以上的细胞有荧光, Western blot检测蛋白水平。
1.5 ELISA检测以含1% BSA的PBS溶液为封闭液, 350 μL/孔, 室温封闭1 h。封闭结束后, 弃去封闭液, 洗板, 加入待测样品(细胞培养基上清液, 制作标准曲线以标准Purified Rat IgG代替样品)100 μL, 室温25±2 ℃孵育2 h。一抗孵育结束后, 洗板, 每孔加Anti-Rat IgG-HRP Antibody 100 μL, 室温孵育2 h。酶标二抗孵育结束后, 洗板, 每孔加入TMB底物溶液100 μL, 室温避光显色30 min后, 每孔加入2 mol/L H2SO4 50 μL终止反应。用酶标仪处检测A450 nm值。绘制标准曲线, 通过标准曲线计算样品浓度。
1.6 Western blot检测提取全细胞蛋白, 按体积的1/4加入5× loading buffer, 沸水煮10 min蛋白变性后-20 ℃保存。SDSPAGE胶分离蛋白(80 V 0.5 h后换100 V 1 h), 转膜(冰浴, 90 V 1.5 h)。封闭(5%脱脂奶粉, 室温, 2 h), 5% BSA稀释FABP4、β-actin一抗(1:1000)4 ℃过夜孵育, TBST 5 min/次× 3次。二抗(1:5000)常温1 h, TBST 5 min/次×3次洗膜后ECL显影。
1.7 Transwell检测50 mg/L Matrigel 1:5稀释液, 50 μL包被Transwell小室底部膜的上室面, 4 ℃风干。使用前用上室加入100 μL无血清培养基DMEM 37 ℃湿化30 min。细胞消化后用无血清培养基DMEM制成细胞悬液, 调整细胞密度为5×104/mL。吸取200 μL细胞悬液加入Transwell小室上室, 下室加入含10%血清的DMEM 600 μL。18 h后取出小室, 去除培养基, 4%多聚甲醛固定10 min后, 结晶紫染色2 h, 显微镜下拍照。
1.8 荧光素酶报告系统由广州赛哲生物公司设计和合成带荧光酶的质粒, 方法参考Zhang等[12]文献报道。转染NL9980细胞。参考Hidaka等[13]的方法, 在24孔板中加入PLB裂解液100 μL, 常温下裂解30 min后收集于一干净的EP管中。将样品加入白色96孔板中, 加入Luciferase Assay BufferⅡ后酶标仪检测荧光值Luc1, 再加入Stop & Glo® Buffer检测荧光值Luc2。Luc1/Luc2即为检测值。
1.9 Q-PCR检测miRNA胰酶消化收集L9981、A549、PC13、NL9980、H661和95C细胞, Trizol重悬后-80 ℃保存。冷冻后样品交付广州锐博生物公司, 其负责miR-129、miR-186、miR-203、miR-204、miR-361和miR-539的检测。反馈数据按2-△△法进行计算。
1.10 miRNA转染miRNA模拟物和抑制物(inhibitor)购至广州锐博生物公司, 按lip-2000的说明书进行转染。
1.11 统计学方法应用SPSS 13.0统计学软件, 利用Levene方法进行方差齐性检验, 确定方差齐性后, 采用单因素方差分析法, 整体比较组间差异有统计学意义后进一步作多重比较, 多重比较采用LSD法。以P < 0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 不同转移能力的肺癌细胞FABP4的分泌和表达水平选择不同转移能力的肺癌细胞株L9981、A549、PC13、NL9980、H661和95C, 检测FABP4表达情况。通过ELISA检测培养基上清中FABP4的表达, 结果显示低转移能力的L9981、A549、PC13分泌FABP4的水平较高转移能力的NL9980、H661、95C减少(图 1A); 同时, 细胞内FABP4蛋白表达水平在高转移能力的NL9980、H661、95C中较低转移能力的L9981、A549、PC13显著增加(图 1B、C)。
通过shRNA技术降低高转移能力并高表达FABP4的NL9980细胞的FABP4表达后(图 2A、B), 其转移能力被显著抑制(图 2C、D); 而低转移能力并低表达FABP4的A549细胞中, 过表达FABP4后(图 2E、F), 其转移能力显著提高(图 2G、H)。
通过miRNA数据网站(http://www.microrna.org/)预测靶向FABP4的miRNA[14], 结果显示有miR-129、miR-155、miR-186、miR-203、miR-204、miR-205、miR-211、miR-361、miR-495和miR-539, 通过文献查询发[15]现miR-155 [15]、miR-205 [16]、miR-211 [17]和miR-495 [18]有促进肿瘤生长转移的作用, 而其他抑制肿瘤生长转移。结合FABP4促进肺癌转移, 而miRNA能靶向FABP4而抑制其表达的作用, 故选择检测抑制肿瘤生长转移的miR-129、miR-186、miR-203、miR-204、miR-361和miR-539。首先, Q-PCR检测发现, miR-203、miR-361和miR-539在高转移能力的肺癌细胞中表达较低转移的显著减少(图 3A~F)。用合成的miRNA模拟物转染NL9980细胞后, 发现miR-203、miR-204和miR-361能显著抑制FABP4的表达; 其中, miR-203的抑制效果最好(图 3G、H)。因此, 下一步实验用miR-203进行。通过miRNA数据网站(http://www.microrna.org/)预测miR-203靶向位点(图 3I), 构建miR-203靶向FABP4位点突变的带荧光素酶报告系统的质粒(MUT), 通过荧光素酶报告系统验证miR-203靶向FABP4的位点, 提示转染miR-203模拟物后, 靶向位点突变组荧光下降较对照组没有变化(图 3J)。
NL9980细胞转染miR-203模拟物后, FABP4蛋白表达下降(图 4A), 其转移能力也显著下降(图 4B); 但转染靶位点突变的FABP4(MUT)后, NL9980细胞FABP4蛋白表达增加不能被miR-203抑制(图 4A), 同时miR-203过表达导致的转移能力下降也被抑制(图 4B)。而在低转移能力的A-549细胞转染miR-203抑制物后, FABP4蛋白表达增加(图 4C), 细胞转移能力显著增强(图 4D)。
FABP4是一类重要的脂类伴侣, 是脂质在细胞中代谢的重要蛋白[19]。研究发现, FABP4可提高乳腺癌细胞ROS水平促进其增殖[20], 也可诱导卵巢癌细胞EMT进而促进细胞的侵袭[6]; 大规模临床研究还发现FABP4与非小细胞肺癌[8]、胰腺导管癌[21]等的疾病进展有非常密切的关系。本研究通过检测肺癌细胞系FABP4表达水平, 发现低转移能力的L9981、A549、PC13培养基中FABP4的水平较高转移能力的NL9980、H661、95C低; 同时, 细胞内FABP4蛋白表达水平在高转移能力的NL9980、H661、95C中较低转移能力的L9981、A549、PC13显著增加。进一步在肺癌细胞系中降低或过表达FABP4, 都显著影响细胞的转移能力。由此说明, FABP4可调控肺癌细胞的转移。
miRNA是一类大小为20~25个核苷酸的非编码小RNA, 参与调节细胞的增殖、分化和凋亡等[22]。miRNA在肿瘤增殖、转移等中的作用已被大量证实[23-24]。既有研究发现miRNA在肺癌组织中表达增加, 可促进肺癌的增殖、侵袭转移[25]; 也有研究发现miRNA可抑制肿瘤发展重要蛋白的表达而抑制其增殖、侵袭转移, 但表达水平被显著抑制[26]。本研究发现可靶向FABP4的miR- 129、miR-186、miR-203、miR-204、miR-361和miR-539中miR-203、miR-361和miR-539的表达在高转移性的肺癌细胞中表达显著减少。过表达miR-203后可显著抑制NL9980的侵袭转移能力; 而抑制miR-203后, A549细胞的转移能力被显著增加, 这与他人在肺癌上的研究结果一致[27]。
进一步的结果还显示除了他人报道的miR-203除了靶向RGS17 [28]、LASP-1 [29]等来抑制肺癌的发生发展外, 本研究发现其还可以显著抑制FABP4的表达。肺癌细胞转染突变miR-203靶点的FABP4后, 其转移能力被miR-203抑制减少。由此提示, FABP4是miR-203抑制肺癌细胞转移的一个重点靶点。综上可以说明FABP4可以抑制肺癌细胞的转移, 而miR-203可以靶向FABP4抑制肺癌细胞的转移, 这也许能为肺癌转移的诊疗提供一个新的靶点。
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