文章快速检索     高级检索
  南方医科大学学报  2017, Vol. 37Issue (7): 902-906  DOI: 10.3969/j.issn.1673-4254.2017.07.08.
0

引用本文 [复制中英文]

聂庆文, 华芮, 周瑶, 李红, 余艳红. 辅助生殖技术中发生枯萎卵的影响因素[J]. 南方医科大学学报, 2017, 37(7): 902-906. DOI: 10.3969/j.issn.1673-4254.2017.07.08.
NIE Qingwen, HUA Rui, ZHOU Yao, LI Hong, YU Yanhong. Blighted ovum in subfertile patients undergoing assisted reproductive technology[J]. Journal of Southern Medical University, 2017, 37(7): 902-906. DOI: 10.3969/j.issn.1673-4254.2017.07.08.

基金项目

国家科技支撑计划项目(2013BAI12B01-7);广东省自然科学基金(1414050001657)

作者简介

聂庆文, 在读硕士研究生, E-mail: 624400903@qq.com

通信作者

李红, 博士, 硕士生导师, 副主任医师, E-mail: lihong6918@126.com

文章历史

收稿日期:2016-11-18
辅助生殖技术中发生枯萎卵的影响因素
聂庆文, 华芮, 周瑶, 李红, 余艳红     
南方医科大学南方医院妇产科生殖中心,广东 广州 510515
摘要: 目的 探究辅助生殖技术(ART)妊娠妇女中枯萎卵的发生率和影响因素。方法 回顾性分析2012年1月~2015年12月在南方医科大学南方医院生殖中心行体外受精-胚胎移植临床妊娠共2378例,包括早期胚胎停育和同期单胎活产,其中胚胎停育根据有无胎芽分为胎芽组和枯萎卵组。比较枯萎卵组、胎芽组和活产组3组间基本信息,如女方年龄、男方年龄、体质量指数(BMI)、基础窦卵泡数(AFC)、基础卵泡刺激素(bFSH)、bFSH/ bLH比值、不孕年限、促性腺激素(Gn)用量及Gn天数、人绒毛膜促性腺激素(hCG)注射日雌二醇值、移植日内膜厚度、获卵数、移植优胚率、移植后10~14 d血清β-hCG值、不孕类型和流产次数,以及不同移植周期、胚胎类型、不孕因素、受精方式间枯萎卵发生率的比较。结果 枯萎卵组的双方年龄、BMI、不孕年限、不孕类型、流产次数和活产组有显著性差异;β-hCG在枯萎卵组<胎芽组<活产组(P=0.000);囊胚移植较卵裂期胚胎显著增加枯萎卵的发生率(11.6% vs 5.6%,P=0.000);3组间其他参数无统计学差异(P>0.05);经多因素Logistic回归分析,女方年龄、β-hCG和囊胚移植是枯萎卵发生的危险因素。结论 女方高龄、血清β-hCG下降和囊胚移植增加枯萎卵发生的风险,枯萎卵的发生可能和早期胚胎发育的基因印记错误有关。
关键词: 辅助生殖技术    枯萎卵    基因印记    
Blighted ovum in subfertile patients undergoing assisted reproductive technology
NIE Qingwen, HUA Rui, ZHOU Yao, LI Hong, YU Yanhong     
Reproductive Medicine Center, Department of Obstetrics and Gynecology, Nanfang Hospital, Southern Medical University, Guangzhou 510515, China
Supported by National Plan for Science and Technology Research (2013BAI12B01-7)
Abstract: Objective To explore the incidence and risk factors of blighted ovum in subfertile patients undergoing assisted reproductive technology (ART). Methods This retrospective analysis was conducted among 2378 patients who were pregnant following embryo transfer at our center from January, 2012 to December, 2015, including cases of early pregnancy losses and simultaneous live births. The cases with early pregnancy losses were divided into embryonic pregnancy and blighted ovum groups based on the presence or absence of an embryonic pole before dilation and curettage. The clinical data of the 3 groups were analyzed for comparisons of the maternal age, paternal age, BMI, AFC, basal FSH, bFSH/bLH, duration of infertility, Gn dosage, Gn days, serum estradiol on the day of HCG administration, endometrium thickness, number of oocyte retrieved, proportion of high-quality embryos transferred, serum β-HCG value on the 10th to 14th days of embryo transfer, infertility type and miscarriage times. The incidences of blighted ovum were compared between cases with different cycles, embryo stages, infertile factors and methods of fertilization. Results Maternal age and paternal age, BMI, duration of infertility, infertility type and miscarriage times differed significantly between cases with blighted ovum and those with live births. Serum β-HCG level was the lowest in blighted ovum group followed by embryonic pregnancy group and then by live birth group. Blastocyst transfer was associated with a significantly higher incidence of blighted ovum as compared with cleavage embryo transfer (11.6% vs 5.6%, P=0.000). No significant difference was found in the other parameters among the 3 groups (P > 0.05). Adjusted logistic regression analysis showed that maternal age, β-HCG level and blastocyst transfer were risk factors of blighted ovum. Conclusion Advanced maternal age, low β-HCG level and blastocyst transfer may increase the risk of blighted ovum possibly in association with gene imprinting errors during the early stage of embryo development.
Key words: assisted reproductive technology    blighted ovum    gene imprinting    

枯萎卵又叫空孕囊,指妊娠6~13周宫内有孕囊但未见胎芽结构[1],是稽留流产的一种常见类型。枯萎卵的发生率尚无确切报道,在自然流产中占15%~40% [1-2],近期有1篇文献枯萎卵在辅助生殖技术(ART)的早期自然流产中占43.5% [3]。关于枯萎卵的病因学研究十分有限,胚胎染色体异常是目前公认的因素[4]。另外,也有学者认为血清铅浓度升高、叶酸和某些矿物质缺乏等和枯萎卵的发生相关[5-6]。通常ART人群在备孕期间戒烟、戒酒、作息规律,有意规避了部分体内外环境影响,并积极补充叶酸和维生素矿物质,但据本研究初步统计枯萎卵的发生率并不比自然妊娠低。目前国内外都将有胎芽无胎芽的流产混合进行研究[7-8],关于ART中枯萎卵发生的相关因素尚未见确切报道,本文旨在为阐明枯萎卵的发生机制奠定基础,为评估辅助生殖技术的安全性提供理论依据。

1 资料和方法 1.1 研究对象

回顾性收集2012年1月~2015年12月在南方医院生殖中心行体外受精-胚胎移植临床妊娠的周期,包括早期胚胎停育440例和同期单胎活产1938例,停育分为枯萎卵147例和胎芽停育293例。纳入标准:B超显示宫内单胎妊娠;停育发生在孕12周内;足月分娩(满37周至不满42周),正常体质量儿(2500~4000 g)。排除标准:异位妊娠、宫内合并宫外孕;双胎及以上妊娠;中晚期流产、死产、死胎、畸形引产;早产、过期产;低体质量儿、巨大儿、出生缺陷;母体子宫解剖异如先天畸形、巨大子宫肌瘤或腺肌瘤导致的宫腔占位,免疫异常如ANA (+)、ACA (+);NC-OPU、供卵、供精、冻卵、冻精;资料不全。

1.2 分组定义

枯萎卵组:移植后4周阴道超声宫腔内只有孕囊未见胎芽或仅见点状胎芽,1周后复查仍未见明显胎芽,147例;胎芽停育组:阴道超声提示孕囊内显示胚胎,但未见胎心或胎心出现后消失,293例;活产组:1938例。

1.3 方法 1.3.1 控制性超促排卵、受精和胚胎培养

控制性超促排卵(COH)采用常规促排卵方案,根据患者的年龄、基础卵巢激素及窦卵泡数使用促性腺激素促排卵,B超监测到2个卵泡直径≥18 mm或3个卵泡直径≥17 mm,当晚肌肉注射人绒毛膜促性腺激素(hCG)(丽珠制药,5000~10 000 U),34~36 h后行B超引导下穿刺取卵术,获得的卵子经体外受精或卵胞质内单精子显微注射(IVF/ICSI)授精。男方取精前禁欲3~7 d,取卵日手淫方式留取精液标本,采用密度梯度离心法处理精液,对于梗阻性无精症患者,取卵当日行经皮附睾穿刺取精或经皮睾丸穿刺取精(PESA /TESA)。IVF或ICSI后第1天观察卵子受精情况,双原核(2PN)卵子作为正常受精卵。第3天时观察胚胎的发育情况后根据Peter分级标准记录胚胎的分级及卵裂球数。囊胚培养则将胚胎移入预先平衡好的G2培养液微滴中,于37 ℃、CO2体积分数为5%的培养箱中继续培养,第5天观察囊胚并依据Gardner评分标准评分。

1.3.2 移植周期

新鲜周期组:自取卵日黄体支持,受精后48~72 h行胚胎移植,移植10~14 d后验血清β-hCG,移植后4周行阴道B超显示孕囊者确定为临床妊娠。冷冻周期组:本中心常规玻璃化冷冻,内膜准备后黄体支持3~5 d行移植冻融胚胎,移植10~14 d后验血清β-hCG,移植后4周行阴道B超显示孕囊者确定为临床妊娠。

1.3.3 胚胎类型

卵裂期胚胎:受精后胚胎开始卵裂,直至囊胚前期。囊胚期胚胎:体外培养第5~7天,分裂球形成中空的球状胚,称为囊胚,分为1~6期。

1.3.4 胚胎质量

正常受精且受精48或72 h后卵裂球数目4~5个或7~8个的Ⅰ级及Ⅱ级胚胎;体外培养5~6 d后囊胚评级3期以上,内细胞团(ICM)和滋养外胚层细胞(TE)评分为A级或B级定义为优质囊胚;另外,把移植Day4胚胎发育至16细胞水平以上的也定义为优质胚胎。

1.4 观察指标

比较3组一般临床特征,包括女方年龄、男方年龄、基础窦卵泡数(AFC)、基础卵泡刺激素(bFSH)、bFSH/ bLH不孕年限、Gn用量、Gn天数、hCG日雌二醇、移植日内膜厚度、获卵数、移植优质胚胎率、β-hCG检测日和血清β-hCG值、不孕类型、流产次数;比较不同移植周期、胚胎类型、不孕因素和受精方式间枯萎卵的发生率。

1.5 统计学方法

采用SPSS 20.0进行统计学分析,计量资料以均数±标准差表示,均值比较采用单因素方差分析,组内多重比较方差齐性选择LSD法,方差不齐选择Dunnett's T3法;计数资料以百分比(%)表示,率的比较采用R*Cχ2检验;将P<0.05的影响因素全部纳入多分类Logistic回归,以活产组为参照,P<0.05为差异具有统计学意义。

2 结果 2.1 基本情况比较

3组患者一般临床特征比较,双方年龄、不孕年限在枯萎卵和胎芽组显著高于活产组(P=0.000,P= 0.005);枯萎卵组BMI显著高于活产组(P=0.003),但和胎芽组无统计学差异;胎芽组Gn用量显著高于其余两组(P=0.000);已知验孕时间波动在10~14 d,β-hCG值随着时间推移呈上升趋势,3组验孕时间无差异(P= 0.264),组间两两比较β-hCG值有统计学差异,枯萎卵组<胎芽停育组<活产组(P=0.000);枯萎卵和胎芽组的不孕类型和流产次数和活产组有显著性差异(P=0.000,P=0.012),3组间其他参数无统计学差异(P>0.05,表 1)。

表 1 3组患者临床特征比较 Table 1 Comparison of clinical data of the patients among the 3 groups (Mean±SD, %)
2.2 不同移植周期、胚胎类型、不孕因素和受精方式间枯萎卵发生率的比较

本中心极少新鲜周期移植囊胚,因此单独分析卵裂期胚胎不同移植周期和冷冻周期移植不同胚胎枯萎卵的发生率,结果显示卵裂期胚胎新鲜和冷冻移植枯萎卵的发生率无统计学差异(P=0.667);在冷冻移植中,囊胚移植的枯萎卵发生率显著高于卵裂期胚胎(11.6% vs 5.6%,P=0.000);不孕因素和受精方式间枯萎卵的发生率无统计学差异(P=0.102,P=0.745,表 2)。

表 2 不同移植周期、胚胎类型、不孕因素和受精方式间枯萎卵发生率的比较 Table 2 Comparison of incidences of blighted ovum in cases with different cycles, embryo stage, infertile factors and method of fertilization (%)
2.3 枯萎卵logistics回归多因素分析

纳入单因素分析中有差异的因素,包括双方年龄、BMI、不孕年限、复发性流产、Gn用量、血清β-hCG值、不孕类型和胚胎类型,作logistic回归分析。经多因素模型检验,女方年龄、β-hCG是枯萎卵发生的危险因素;校正年龄等混杂因素后,囊胚移植也是枯萎卵发生的危险因素(OR=4.051,表 3)。

表 3 枯萎卵logistic回归多因素分析 Table 3 Logistic regression analysis of the risk factors of blighted ovum
3 讨论

本研究2378例ART样本中,枯萎卵占早期流产的33.4%,囊胚移植中为40.2%,呈升高趋势,但均低于前文报道的43.5% [3]。囊胚增加枯萎卵的发生风险(OR= 4.051),那么枯萎卵发生率可能和该中心的囊胚移植率有关。在单因素分析中,男方年龄、女方年龄、BMI、不孕年限、不孕类型、流产次数、β-HCG和囊胚移植都和枯萎卵的发生相关。女方高龄是早期自然流产的独立危险因素,具体机制不明,≥35岁妇女胚胎绒毛染色体非整倍体率高达50% [9]。男方年龄在ART中的影响虽不如女方显著,但超过40岁精子DNA碎片和胚胎非整倍体率也升高[10]。超重或肥胖(BMI≥25 kg/m2)不增加非整倍体的发生率[9],但会改变表观遗传修饰作用影响基因的表达[11]。流产组女性年龄升高,子宫内膜容受性下降,不孕年限变长[12];有研究表明既往自然流产会增加再次流产的机会,导致自然流产的因素可能也和枯萎卵的发生相关[13],所以枯萎卵和胎芽组都是以继发性不孕为主,流产次数多于活产组。

在确认宫内早孕后,血清β-HCG越低,枯萎卵的发生风险越高。早孕期血清β-HCG的水平是由绒毛合体滋养层细胞的数量和发育状态决定,胚胎的生长和滋养层的发育起着相互促进的作用[14]。枯萎卵的超声征象囊壁薄,大多数无卵黄囊,曾有学者对其妊娠囊观察,囊外缺乏绒毛组织,病理切片中绒毛细胞稀少[15],这可能是枯萎卵的血清β-HCG水平显著低于其他妊娠的主要原因。在6~8周的枯萎卵中发现β-HCG、妊娠相关血浆蛋白(PAPP-A)、妊娠蛋白1 (SP-1)、雌二醇和孕酮均低于正常妊娠,且除PAPP-A外,其余4项也低于有胎芽的流产类型[14],和本研究结果一致。但Agudelo等[16]认为枯萎卵β-HCG并不比胎芽妊娠低,因为β-HCG在核型异常的早期流产中显著高于正常核型,而枯萎卵以异常核型为主,缺点是此研究仅纳入了11例样本。临床大力倡导囊胚移植的优点,但最近一项Mate分析显示,囊胚移植并未明显提高临床妊娠率、活产率或降低流产率,相反延长体外培养可能对胚胎造成潜在的损伤,增加额外的损耗[17]。滋养细胞比内细胞团对环境更加敏感,动物实验表明体外培养过程中不适的营养成分、温度、氧分压和PH值使胚胎长时间处于应激状态,会干扰DNA甲基化过程[18]。对小鼠体内和体外形成的囊胚进行比较,体外组的胚胎头臀长和胎盘更小,妊娠丢失率增加,同时检测到胎盘中H19、KvDMR1、Snrpn基因的甲基化水平显著下降[19]。囊胚培养可有效降低胚胎的非整倍体率,但增加枯萎卵的发生风险,推测枯萎卵可能和染色体异常关系不大,不排除和DNA甲基化异常有关。

关于枯萎卵的染色体异常率报道不一,既往有2项研究认为枯萎卵和胎芽停育的核型一致,染色体异常率高[4, 20];但近3年的3篇文献报道枯萎卵的染色体异常率是显著低于胎芽停育的[3, 21-22]。特别是Ouyang等[3]大样本回顾性研究,研究对象及纳入排除标准和本文相近,得到枯萎卵的染色体异常率仅为37.5%。近年来关于基因印记和流产的关系已有报道,主要通过影响滋养层来阻碍胚胎的生长发育[23]。枯萎卵的β-HCG水平下降和绒毛血管生成缺陷就是滋养层功能不良的表现[24]。枯萎卵是一种早期胚胎宫内生长受限,吴爱华根据胎芽情况将早期稽留流产分为发育正常、发育偏慢和空囊型3组,发现空囊型中5-mC含量最低,且5-mC含量与核型正常与否无关[25]。5-mC是DNA甲基化的标志性产物,而DNA甲基化又是基因印记的主要形式,5-mC含量下降意味着枯萎卵很可能和印记丢失有关。在自然界有一种核型的流产和枯萎卵的表型极为相似:三倍体Ⅰ型。三倍体Ⅰ型包含两个母源性染色体组和一个父源性染色体组,表现为胎盘小且非囊性,胎儿极度发育不全[26]。根据表观遗传学理论,母源性基因高表达限制了胚胎生长,是造成这种表型的重要机制。结合以上原因,有理由认为枯萎卵可能是母系印记丢失、基因表达失衡的结果。

综上所述,在ART中女方年龄增大、β-HCG值降低和囊胚移植会增加枯萎卵的发生风险,胚胎冻融、单精子卵胞浆注射、Gn用量以及胚胎质量等对枯萎卵的发生影响不大。李秋芬认为枯萎卵的发生还和胚胎质量相关[27],但其样本量太小,本研究未得出此结论。辅助生殖技术的安全性问题一直是讨论的热点,近十几年来较多学者认为ART可能影响表观遗传的调控,特别是印记基因的表达。配子形成和胚胎发育早期是表观遗传印记擦除和重建的重要阶段,ART的任何环节均有可能干扰印记的建立,从而影响胚胎植入、胎盘形成和胚胎生长等[19, 28-30]。枯萎卵的发生和囊胚培养密切相关,还需进一步基础实验来阐明机制。另外,在临床工作中要不断改进实验室技术,优化培养条件,设立严格的指征,尽可能减少额外的体外培养。

参考文献
[1] Robinson HP. The diagnosis of early pregnancy failure by sonar[J]. Br J Obstet Gynaecol, 1975, 82(11): 849-57. DOI: 10.1111/bjo.1975.82.issue-11.
[2] Chen HF, Chao KH, Shew JY, et al. Expression of leukemia inhibitory factor and its receptor is not altered in the decidua and chorionic villi of human anembryonic pregnancy[J]. Hum Reprod, 2004, 19(7): 1647-54. DOI: 10.1093/humrep/deh193.
[3] Ouyang Y, Tan Y, Yi Y, et al. Correlation between chromosomal distribution and embryonic findings on ultrasound in early pregnancy loss after IVF-embryo transfer[J]. Hum Reprod, 2016, 31(10): 2212-8. DOI: 10.1093/humrep/dew201.
[4] Mu?oz M, Arigita M, Bennasar M, et al. Chromosomal anomaly spectrum in early pregnancy loss in relation to presence or absence of an embryonic pole[J]. Fertil Steril, 2010, 94(7): 2564-8. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2010.04.011.
[5] Yin Y, Zhang T, Dai Y, et al. The effect of plasma Lead on anembryonic pregnancy[J]. Ann NY Acad Sci, 2008, 1140(8): 184-9.
[6] Yin Y, Zhang T, Dai Y, et al. Pilot study of association of anembryonic pregnancy with 55 elements in the urine, and serum level of folate, homocysteine and S-adenosylhomocysteine in Shanxi Province, China[J]. J Am Coll Nutr, 2009, 28(1): 50-5. DOI: 10.1080/07315724.2009.10719761.
[7] Zechner U, Pliushch G, Schneider E, et al. Quantitative methylation analysis of developmentally important genes in human pregnancy losses after ART and spontaneous conception[J]. Mol Hum Reprod, 2010, 16(9): 704-13. DOI: 10.1093/molehr/gap107.
[8] Zheng HY, Tang Y, Niu J, et al. Aberrant DNA methylation of imprinted loci in human spontaneous abortions after assisted reproduction techniques and natural conception[J]. Hum Reprod, 2013, 28(1): 265-73. DOI: 10.1093/humrep/des358.
[9] Kroon B, Harrison K, Martin N, et al. Miscarriage karyotype and its relationship with maternal body mass index, age, and mode of conception[J]. Fertil Steril, 2011, 95(5): 1827-9. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2010.11.065.
[10] Nanassy L, Carrell DT. Paternal effects on early embryogenesis[J]. J Exp Clin Assist Reprod, 2008, 5(3): 2.
[11] Crujeiras AB, Casanueva FF. Obesity and the reproductive system disorders: epigenetics as a potential bridge[J]. Hum Reprod Update, 2015, 21(2): 249-61. DOI: 10.1093/humupd/dmu060.
[12] Harton GL, Munné S, Surrey M, et al. Diminished effect of maternal age on implantation after preimplantation genetic diagnosis with array comparative genomic hybridization[J]. Fertil Steril, 2013, 100(6): 1695-703. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2013.07.2002.
[13] 曾琼芳, 段金良, 蒋元华, 等. IVF/ICSI妊娠后早期流产相关因素分析[J]. 中国性科学, 2013(02): 37-9. DOI: 10.3969/j.issn.1672-1993.2013.02.012.
[14] Johnson MR, Riddle AF, Sharma V, et al. Placental and ovarian hormones in anembryonic pregnancy[J]. Hum Reprod, 1993, 8(1): 112-5. DOI: 10.1093/oxfordjournals.humrep.a137857.
[15] 殷妍. 孕妇营养状况与枯萎卵妊娠关系的研究[D]. 北京: 中国协和医科大学, 2009. http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10023-2009150743.htm
[16] Agudelo B, Muneton CM, Vasquez G, et al. Correlation between serum levels of 17 beta-estradiol, progesterone and beta-human chorionic gonadotropin and the karyotype of first trimester anembryonic and embryonic pregnancies[J]. Early Pregnancy, 2001, 5(3): 176-190.
[17] Martins WP, Nastri CO, Rienzi L, et al. Blastocyst versus cleavage stage embryo transfer: a systematic review and meta-analysis of the reproductive outcomes[J]. Ultrasound Obstet Gynecol, 2016.
[18] Denomme MM, Mann MR. Genomic imprints as a model for the analysis of epigenetic stability during assisted reproductive technologies[J]. Reproduction, 2012, 144(4): 393-409. DOI: 10.1530/REP-12-0237.
[19] Li B, Chen S, Tang N, et al. Assisted Reproduction Causes Reduced Fetal Growth Associated with Downregulation of Paternally Expressed Imprinted Genes That Enhance Fetal Growth in Mice[J]. Biol Reprod, 2016, 94(2): 45.
[20] Lathi RB, Mark SD, Westphal LM, et al. Cytogenetic testing of anembryonic pregnancies compared to embryonic missed abortions[J]. J Assist Reprod Genet, 2007, 24(11): 521-4. DOI: 10.1007/s10815-007-9166-1.
[21] Cheng HH, Ou C Y, Tsai CC, et al. Chromosome distribution of early miscarriages with present or absent embryos: female predominance[J]. J Assist Reprod Genet, 2014, 31(8): 1059-64. DOI: 10.1007/s10815-014-0261-9.
[22] Romero S T, Geiersbach K B, Paxton CN, et al. Differentiation of genetic abnormalities in early pregnancy loss[J]. Ultrasound Obstet Gynecol, 2015, 45(1): 89-94. DOI: 10.1002/uog.14713.
[23] Hanna CW, Mcfadden DE, Robinson WP. DNA methylation profiling of placental villi from karyotypically normal miscarriage and recurrent miscarriage[J]. Am J Pathol, 2013, 182(6): 2276-84. DOI: 10.1016/j.ajpath.2013.02.021.
[24] Meegdes BH, Ingenhoes R, Peeters LL, et al. Early pregnancy wastage: relationship between chorionic vascularization and embryonic development[J]. Fertil Steril, 1988, 49(2): 216-20. DOI: 10.1016/S0015-0282(16)59704-0.
[25] 吴爱华, 勾晨雨, 黎璞, 等. 不同类型早期稽留流产中的甲基化异常探讨[J]. 实用妇产科杂志, 2016(5): 342-5.
[26] Yamazaki W, Takahashi M, Kawahara M. Restricted development of mouse triploid fetuses with disorganized expression of imprinted genes[J]. Zygote, 2015, 23(6): 874-84. DOI: 10.1017/S0967199414000550.
[27] 李秋芬, 全松, 邢福祺. 体外受精-胚胎移植术后发生枯萎卵的相关因素[J]. 广东医学, 2008(2): 282-4.
[28] Denomme MM, Mann MR. Maternal control of genomic imprint maintenance[J]. Reprod Biomed Online, 2013, 27(6): 629-36. DOI: 10.1016/j.rbmo.2013.06.004.
[29] Uyar A, Seli E. The impact of assisted reproductive technologies on genomic imprinting and imprinting disorders[J]. Curr Opin Obstet Gynecol, 2014, 26(3): 210-21. DOI: 10.1097/GCO.0000000000000071.
[30] Eroglu A, Layman LC. Role of ART in imprinting disorders[J]. Semin Reprod Med, 2012, 30(2): 92-104. DOI: 10.1055/s-0032-1307417.