随着现代社会发展,女性生育年龄普遍推迟,导致接受辅助生殖治疗的高龄妇女越来越多。我国“全面二孩”政策实施后,部分40岁以上符合生育政策的高龄妇女表现出较强的生育愿望,并积极寻求辅助生殖治疗。但随着年龄的增加,女性生育潜能明显下降,如何帮助高龄妇女解决生育问题,成为了困扰临床医生的难题。目前国内仅有少量周期数较少的文献报道40岁以上妇女接受辅助生殖技术的治疗结局,随着年龄的增加,临床妊娠率逐渐下降,流产率逐渐升高,活产率下降[1-3]。高龄妇女对辅助生殖技术的需求增长,但不能取得较好的治疗结局,且对于高龄妇女助孕年龄上限也存在争议[4]。本研究回顾性地分析了2007年1月~2015年12月在我中心接受非赠卵体外受精- 胚胎移植(in vitro fertilization-embryo transfer, IVF-ET)或单精子卵胞浆内注射-胚胎移植(intracytoplasmic sperm injectionembryo transfer, ICSI-ET)的40 岁以上的不孕妇女共1050个周期的临床特征和治疗结局,探讨高龄妇女的IVF/ICSI-ET治疗效果与应用价值,旨在为高龄妇女的辅助生殖治疗提供更好的临床依据。
1 资料和方法 1.1 研究对象及分组收集2007年1月~2015年12月在南方医科大学南方医院生殖医学中心进行非赠卵IVF/ICSI-ET治疗的717名40岁以上妇女共1050个起始周期的临床资料,年龄40~51岁,平均为41.5岁,不孕年限1~22年,平均为7.1年。其中,153名患者诊断为原发性不孕症的占21.3%(153/717),564名患者诊断为继发性不孕症的占78.7%(564/717)。1050个起始周期,按每岁为1个年龄组分为5组:40岁组(n=393),41岁组(n=266),42岁组(n=158),43岁组(n=107),44岁组(n=64),≥45岁组(n=62)。其中≥45岁组,平均年龄为46.2岁。不孕原因有:盆腔输卵管因素、子宫内膜异位症、排卵障碍、卵巢储备功能减退、女性高龄、子宫因素、男方因素等。
1.2 方法根据患者卵巢储备功能及基础疾病,采用控制性促排卵方案,包括:长方案、短方案、超长方案、拮抗剂方案、促排卵方案。根据配子情况及既往IVF/ICSI治疗周期受精情况决定行IVF或ICSI。取卵后72 h选择形态学评分最高的1~3个胚胎进行移植。取卵当日开始常规给予黄体酮肌注、达芙通及补佳乐口服进行黄体支持。移植后12 d查血清绒毛膜促性腺激素(β-hCG),移植后4周行阴道超声检查,见妊娠囊者为临床妊娠,见2个或2个以上妊娠囊定义为多胎妊娠。妊娠12周前,妊娠终止则为早期自然流产。妊娠12周时,行B超检查至少有一个胎儿正常发育,则定义为继续妊娠[5]。妊娠12周至妊娠28周间,因各种原因所致的妊娠终止,定义为晚期妊娠丢失。
1.3 统计学处理采用SPSS 20.0软件包进行统计学分析。计量资料用均数±标准差表示,计数资料以百分率表示,多组计量资料比较采用单因素方差分析或非参数检验;率的比较采用χ2检验。P<0.05 为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 患者一般情况及临床特征共717例患者,1050个起始周期,其中19个周期因卵巢对促性腺激素(Gn)反应低下取消周期(1.8%),19个周期未取到卵(1.8%),76个周期因未受精或未形成可移植胚胎而取消移植(7.2%),186个周期因其他原因取消移植(17.7%),共750 个移植周期,移植取消率为28.6%(300/1050)。不同年龄组患者的一般情况见表 1。基础卵泡刺激素(FSH)水平、黄体生成素(LH)水平、雌二醇(E2)水平在各组间无统计学差异,基础窦状卵泡数(AFC)随年龄增长而逐渐减少,差异有统计学意义(P<0.001)。身体质量指数(BMI)、移植取消率在各组间有统计学差异(P=0.001)。
![]() |
表 1 不同年龄组一般情况的比较 Table 1 General clinical data of women in different age groups |
每个年龄组Gn平均用量均大于3500 IU,且随年龄增长呈递增趋势,但44岁组和≥45岁组Gn平均用量均小于43岁,各组间无统计学差异(P=0.328)。Gn使用时间,hCG日LH水平,hCG日P水平在不同年龄组间均无统计学差异。40岁组平均hCG日E2水平最高,而44岁组平均hCG日E2水平最低,各组间差异有统计学意义(P=0.007)。随年龄增长,获卵数递减,受精率、正常受精率均下降,可移植胚胎数递减,但42岁组平均获卵数最少,≥45岁组正常受精率较44岁组高,可移植胚胎数也多于44岁组,以上数据组间差异有统计学意义(均P<0.05)。不同年龄组患者的促排卵及胚胎情况见表 2。
![]() |
表 2 不同年龄组促排卵情况的比较 Table 2 Comparison of clinical parameters of ovarian stimulation in different age groups |
1032个取卵周期中,共750个周期进行了新鲜胚胎移植(72.7%),共133个周期取得临床妊娠,临床妊娠率为17.7%(133/750),其中64 个周期获活产,活产率为8.5%(64/750)。44岁组仅2个移植周期取得临床妊娠,但均为早期自然流产。≥45岁组,共42个移植周期,无1例取得临床妊娠。随年龄增加,临床妊娠率、继续妊娠率、活产率、胚胎着床率均逐渐下降,不同年龄组间差异具有统计学差异(P<0.01),早期自然流产率、晚期妊娠丢失率逐渐升高,但差异无统计学意义(P>0.05)。多胎妊娠率、早产发生率在各组间均无统计学差异(P> 0.05)。不同年龄组患者的妊娠结局见表 3。
![]() |
表 3 不同年龄组妊娠结局的比较 Table 3 Comparison of clinical outcomes in different age groups |
根据患者具体情况,采用的控制性促排卵方案有:长方案、短方案、超长方案、拮抗剂方案、促排卵方案,各种方案在新鲜胚胎移植周期中所占比例:长方案为48.5%(364/750),短方案为7.9%(59/750),拮抗剂方案为37.1%(278/750),超长方案为0.6%(5/750),促排卵方案为5.9%(44/750)。各方案总妊娠率分别为23.7%、10.2%、13.3%、60.0%及2.3%,差异有统计学意义(P<0.001)。各方案总活产率分别为55.8%、50.0%、29.7%、66.7%及0,差异有统计学意义(P=0.038)。在不同年龄组内,对各方案临床妊娠率进行比较:40岁组、41岁组内,各方案临床妊娠率差异有统计学意义(均P<0.05),其余各组内,不同方案的临床妊娠率无显著差异(均P> 0.05)。
对长方案与拮抗剂方案的临床妊娠率与活产率进行比较,两者总妊娠率与总活产率均有统计学差异(P 均<0.05),在40岁组内,两者临床妊娠率差异有统计学意义(P=0.008),但是,在其余各年龄组内,长方案与拮抗剂方案的临床妊娠率无显著差异(P均>0.05)。不同促排卵方案的妊娠结局见表 4。
![]() |
表 4 不同促排卵方案临床妊娠率和活产率的比较 Table 4 Comparison of e clinical pregnancy rate and live birth rate in women receiving different ovarian stimulation protocols |
750 个移植周期中,移植胚胎数取决于可用胚胎数,106个周期仅1个胚胎移植,其中4个周期取得临床妊娠,临床妊娠率为3.8%(4/106);182个周期移植2个胚胎,其中23 个周期取得临床妊娠,临床妊娠率为12.6%(23/182);461个周期移植3个胚胎,其中106个周期取得临床妊娠,临床妊娠率为23.0%(106/461),各组间差异有统计学意义(P<0.001)。各年龄组内,按移植胚胎个数不同进行临床妊娠率的见表 5。各年龄组中,移植3个胚胎与移植1个与2个胚胎相比,均能取得更高的临床妊娠率。
![]() |
表 5 不同移植胚胎数的妊娠结局的比较 Table 5 Comparison of clinical outcomes in women with different numbers of embryo transferred |
美国疾病预防与控制中心(Centers for Disease Control and Prevention, CDC)发布的2013年度美国辅助生殖技术年度总结报告中显示,行自卵IVF/ICSI助孕治疗的患者中,40 岁者临床妊娠率为25%,41 岁为21%,42岁为16%,43岁为12%,44岁为8%,>44岁为4%,而以上年龄段的活产率则分别为17%、13%、9%、6%、3%与1%[6]。本研究结论与上述数据类似,提示年龄≥40岁的患者临床妊娠率逐年显著下降,并且年龄≥44岁获活产的概率极低。
大量研究证明,与年龄相关的卵巢储备功能减退、卵巢衰老与卵子质量下降是影响高龄妇女妊娠的主要因素[7-8]。基础FSH水平升高,基础AFC减少被视为卵巢储备功能减退直接的证据[9-10]。本研究中各组平均基础AFC随年龄递增而减少,但平均基础FSH、Gn平均用量、Gn使用时间在各组间无统计学差异,其原因可能为,对于≥40岁的高龄不孕妇女的助孕要求,医生有选择性地接受了部分卵巢储备功能尚未明显衰竭的患者进行IVF/ICSI治疗,而增加Gn量不能够增加卵巢反应性。40~44岁年龄组中,平均可移植胚胎数随年龄增长而逐渐减少,临床妊娠率、活产率下降则更为显著。此外,平均受精率、平均正常受精率与胚胎着床率随年龄增长呈下降趋势,早期自然流产率则呈随年龄增长而升高,44岁组的早期自然流产率高达100%。以上数据均表明,在各年龄组平均卵巢储备功能并无显著差异的情况下,与卵子数量相比,卵子质量的下降对妊娠结局的影响更为重要[11-12]。
许多研究证明,随着年龄增长,卵子质量下降,从而所致胚胎质量下降。其中,卵母细胞减数分裂过程中染色体非整倍体发生率增加被认为最主要的原因[13]。有研究证明,随年龄增长,卵母细胞进行减数第一次分裂(MI)过程中,着丝粒结构异常与功能异常导致的姐妹着丝粒排列异常、与纺锤体连接异常可能是卵母细胞非整倍发生率增加的原因[14]。也有研究认为,线粒体功能紊乱也是卵子质量下降的重要原因,卵母细胞中线粒体功能障碍可能导致相关表观遗传学改变,颗粒细胞中线粒体功能障碍所导致的能量传递障碍同样可能影响卵母细胞质量[15-17]。
≥40岁的高龄妇女进行辅助生殖技术助孕的低妊娠率、低活产率和高流产率,不仅耗费了患者的时间、精力与财力,也是对临床医生的一大挑战。目前尚无研究报道,是否存在针对高龄女性最佳的促排卵方案,各种促排卵方案的优劣存在较大争议。本研究中,超长方案能取得妊娠率为60%,但例数较少,统计学意义不大,需扩大样本量进行进一步研究。长方案与拮抗剂方案是目前应用的较多的两种促排卵方案,本研究中,长方案相比于拮抗剂方案,能取得更高的临床妊娠率,但在年龄≥41岁以上患者中,两者临床妊娠率并无显著差异。拮抗剂方案在国内应用时间较短,本研究为回顾性研究,数据存在一定偏倚,该结论需进行随机对照研究证实。一项荟萃研究则证明,对于卵巢低反应患者,拮抗剂方案与激动剂方案临床妊娠率并无统计学差异。[18]近期有研究认为,黄体期取卵可在更短时间内累计更多卵子,从而有助于形成更多可移植胚胎,被认为有助于改善卵巢低储备患者妊娠结局[19-21]。尽管有研究证明,卵巢低储备患者进行黄体期取卵与卵泡期取卵,所获形成囊胚整倍体率无明显差异[22],黄体期取卵也并不增加分娩异常风险,然而黄体期取卵的远期影响目前尚不清楚,其安全性仍有争议[23]。促排卵前使用DHEA预处理,在促排期间联合使用生长激素、促黄体生成素是否能改善卵巢储备功能减退患者的临床妊娠率也存在争议[24-26]。
有研究证明,对于卵巢低储备患者,非选择性单胚胎移植活产率明显低于移植2个或2个以上胚胎,前者卵巢储备也明显低于后者[27]。本研究也发现,≥40岁患者中,移植单胚胎者临床妊娠率明显低于移植2个或3个胚胎者,提示移植2个或3个胚胎有助于提高每周期临床妊娠率,缩短高龄患者到达妊娠时间。以往有学者认为胚胎选择技术可解决胚胎非整体所导致的高流产率问题[28],但近期也有研究认为,胚胎植入前筛查(PGS)、Time-Lapse封闭式胚胎培养系统等胚胎选择技术并不能有效改善妊娠结局[29]。赠卵辅助生殖技术仍然是解决高龄妇女不孕问题的最有效途径[6]。
目前高科技的体外受精技术并不能够改善高龄妇女卵子老化和胚胎质量下降的问题,不能够降低流产率和增加活产率,故应告知高龄女性生育的各种风险,并对广泛地教育女性在最佳年龄期进行生育;由于各种原因不能够在最佳生育年龄生育的女性,未来可以考虑冻存卵子、卵巢和胚胎。
综上所述,女性年龄超过40岁,随年龄增长,胚胎着床率、临床妊娠率、活产率逐年降低,自然流产率逐年增高,且各种妊娠相关并发症也明显升高。因此我们认为女性年龄应是高龄女性进行辅助生殖治疗的适应症,对于≥40岁妇女即使无其他明显导致不孕的病因,也应该及时实施IVF治疗尽早帮助获得妊娠,但应充分告知其低妊娠率、低活产率、高流产率及各种孕期并发症的风险,并建议累计更多胚胎后移植。在目前技术条件下,对于年龄≥44岁妇女,是否仍需为其进行使用自身卵子的IVF治疗,则需充分知情告知弊,寻求赠卵可能是更好的选择。随着社会发展,生育年龄推迟,高龄妇女对辅助生殖治疗的需求将不断增加,如何提高高龄妇女辅助生殖治疗妊娠结局仍有待进一步研究。未来,对于不能够在最佳生育年龄生育的女性,冻存卵子、卵巢和胚胎可能成为生育力保存有效方法。
[1] | 冯翠娥, 姜宏. 40岁以上高龄妇女体外受精/卵胞质内单精子显微注射-胚胎移植临床结局分析[J]. 生殖与避孕, 2015, 35 (1): 62-6. |
[2] | 葛明晓, 陶莉莉, 陈小平, 等. 高龄妇女409个周期体外受精的临床结局[J]. 广东医学, 2014, 35 (12): 1907-10. |
[3] | 杨美琼, 马文敏, 罗国群, 等. 40岁以上的不孕妇女行IVF/ICSI-ET治疗463周期临床分析[J]. 实用医学杂志, 2013, 29 (18): 2947-9. |
[4] | Klitzman RL. How old is too old? Challenges faced by cliniciansconcerning age cutoffs for patients undergoing in vitro fertilization[J]. Fertil Steril, 2016, 106 (1): 216-24. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2016.03.030. |
[5] | Barcena P, Rodriguez M, Obradors A, et al. Should we worry aboutthe clock? Relationship between time to ICSI and reproductiveoutcomes in cycles with fresh and vitrified oocytes[J]. HumReprod, 2016, 31 (6): 1182-91. |
[6] | Sunderam S, Kissin DM, Crawford SB, et al. Assisted reproductivetechnology surveillance-United States, 2013[J]. MMWR SurveillSumm, 2015, 64 (11): 1-25. DOI: 10.15585/mmwr.ss6411a1. |
[7] | Broekmans FJ, Soules MR, Fauser BC. Ovarian aging: mechanismsand clinical Consequences[J]. Endocr Rev, 2009, 30 (5): 465-93. DOI: 10.1210/er.2009-0006. |
[8] | Velde ER, Pearson PL. The variability of female reproductive ageing[J]. Hum Reprod Update, 2002, 8 (2): 141-54. DOI: 10.1093/humupd/8.2.141. |
[9] | Amanvermez R, Tosun M. An update on ovarian aging and ovarianreserve tests[J]. Int J Fertil Steril, 2016, 9 (4): 411-5. |
[10] | Practice Committee of the American Society for ReproductiveMedicine. Testing and interpreting measures of ovarian reserve: acommittee opinion[J]. Fertil Steril, 2015, 103 (3): e9-e17. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2014.12.093. |
[11] | Younis JS, Ben-Ami M, Ben-Shlomo I. The Bologna criteria forpoor ovarian response: a contemporary critical appraisal[J]. JOvarian Res, 2015, 8 (1): 1-10. DOI: 10.1186/s13048-015-0124-8. |
[12] | Rambags B, Van Boxtel D, Tharasanit T, et al. Advancing maternalage predisposes to mitochondrial damage and loss duringmaturation of equine oocytes in vitro[J]. Theriogenology, 2014, 81 (7): 959-65. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2014.01.020. |
[13] | Jones KT, Lane SI. Molecular causes of aneuploidy in mammalianeggs[J]. Development, 2013, 140 (18): 3719-30. DOI: 10.1242/dev.090589. |
[14] | Patel J, Tan SL, Hartshorne GM. Unique geometry of sisterkinetochores in human oocytes during meiosis I May explainmaternal age-associated increases in chromosomal abnormalities[J]. Biol Open, 2016, 5 (2): 178-84. DOI: 10.1242/bio.016394. |
[15] | Tatone C, Amicarelli F. The aging ovary--the poor granulosacells[J]. Fertil Steril, 2013, 99 (1): 12-7. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2012.11.029. |
[16] | Ge ZJ, Schatten H, Zhang CL, et al. Oocyte ageing and epigenetics[J]. Reproduction, 2015, 149 (3): R103-14. DOI: 10.1530/REP-14-0242. |
[17] | Simsek-Duran F, Li F, Ford W, et al. Age-Associated metabolic andmorphologic changes in mitochondria of individual mouse andhamster oocytes[J]. PLoS One, 2013, 8 (5): e64955. DOI: 10.1371/journal.pone.0064955. |
[18] | Pu D, Wu J, Liu J. Comparisons of GnRH antagonist versus GnRHagonist protocol in poor ovarian responders undergoing IVF[J]. Hum Reprod, 2011, 26 (10): 2742-9. DOI: 10.1093/humrep/der240. |
[19] | Zhang J. Luteal phase ovarian stimulation following oocyteretrieval: is it helpful for poor responders [J]? ReproductiveBiology and Endocrinology, 2015, 13: 76. |
[20] | Kuang YP, Chen QJ, Hong QQ, et al. Double stimulations duringthe follicular and luteal phases of poor responders in IVF/ICSIprogrammes (Shanghai protocol)[J]. Reprod Biomed Online, 2014, 29 (6): 684-91. DOI: 10.1016/j.rbmo.2014.08.009. |
[21] | Wei LH, Ma WH, Tang N, et al. Luteal-phase ovarian stimulation isa feasible method for poor ovarian responders undergoing in vitrofertilization/intracytoplasmic sperm injection-embryo transfertreatment compared to a GnRH antagonist protocol: A retrospectivestudy[J]. Taiwan J Obstet Gynecol, 2016, 55 (1): 50-4. DOI: 10.1016/j.tjog.2015.07.001. |
[22] | Ubaldi FM, Capalbo A, Vaiarelli A, et al. Follicular versus lutealphase ovarian stimulation during the same menstrual cycle(DuoStim)in a reduced ovarian reserve population results in asimilar euploid blastocyst formation rate: new insight in ovarianreserve exploitation[J]. Fertil Steril, 2016, 105 (6): 1488-95. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2016.03.002. |
[23] | Chen H, Wang Y, Lyu Q, et al. Comparison of live-birth defectsafter luteal-phase ovarian stimulation vs conventional ovarianstimulation for in vitro fertilization and vitrified embryo transfercycles[J]. Fertil Steril, 2015, 103 (5): 1194-201. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2015.02.020. |
[24] | Kara M, Aydin T, Aran T, et al. Does dehydroepiandrosteronesupplementation really affect IVF-ICSI outcome in women withpoor ovarian reserve[J]? Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol, 2014,173: 63-5. |
[25] | Eftekhar M, Aflatoonian A, Mohammadian F, et al. Adjuvant growthhormone therapy in antagonist protocol in poor respondersundergoing assisted reproductive technology[J]. Arch GynecolObstet, 2013, 287 (5): 1017-21. |
[26] | Barrenetxea G, Agirregoikoa JA, Jimenez MR, et al. Ovarianresponse and pregnancy outcome in poorresponder women: arandomized controlled trial on the effect of luteinizing hormonesupplementation on in vitro fertilization cycles[J]. Fertil Steril, 2008, 89 (3): 546-53. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2007.03.088. |
[27] | Gleicher N, Vega MV, Darmon SK, et al. Live-birth rates in verypoor prognosis patients, who are defined as poor responders underthe Bologna criteria, with nonelective single embryo, two-embryo,and three or more embryos transferred[J]. Fertil Steril, 2015, 104 (6): 1435-41. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2015.08.023. |
[28] | Harper J, Coonen E, De Rycke M, et al. What next forpreimplantation genetic screening (PGS)? A position statementfrom the ESHRE PGD Consortium steering committee[J]. HumReprod, 2010, 25 (4): 821-3. |
[29] | Gleicher N, Kushnir VA, Barad DH. Is it time for a paradigm shiftin understanding embryo selection[J]? Reprod Biol Endocrinol,2015, 13: 3. |