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  南方医科大学学报  2016, Vol. 36Issue (9): 1286-1290  DOI: 10.3969/j.issn.1673-4254.2016.09.22.
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叶慧瑾, 白建杰, 郭培培, 汪威, 林春水. 丙泊酚下调水通道蛋白3和基质金属蛋白酶-9表达抑制人肺癌A549细胞的侵袭力[J]. 南方医科大学学报, 2016, 36(9): 1286-1290. DOI: 10.3969/j.issn.1673-4254.2016.09.22.
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YE Huijin, BAI Jianjie, GUO Peipei, WANG Wei, LIN Chunshui. Propofol suppresses invasion of human lung cancer A549 cells by down-regulating aquaporin-3 and matrix metalloproteinase-9[J]. Journal of Southern Medical University, 2016, 36(9): 1286-1290. DOI: 10.3969/j.issn.1673-4254.2016.09.22.
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基金项目

广东省科技计划项目(2012A030400014);广州市科技计划项目(12C22121552)

作者简介

叶慧瑾,硕士研究生,E-mail: yehj126@126.com

通信作者

林春水,主任医师,医学博士,博士生导师,E-mail: lcsnfyy@126.com

文章历史

收稿日期:2016-05-07
丙泊酚下调水通道蛋白3和基质金属蛋白酶-9表达抑制人肺癌A549细胞的侵袭力
叶慧瑾, 白建杰, 郭培培, 汪威, 林春水     
南方医科大学南方医院麻醉科,广东 广州 510515
摘要: 目的 探讨丙泊酚对人肺癌A549细胞水通道蛋白3(AQP-3)、基质金属蛋白酶-9(MMP-9)表达及其侵袭力的影响。 方法 A549细胞经丙泊酚不同剂量(25、50、100 μmol/L)和不同时间(12、24 h)处理。用RT-PCR方法观察丙泊酚对A549细胞AQP-3 mRNA的作用,用Western Blot方法和Transwell侵袭实验分别检测不同浓度丙泊酚作用24 h对A549细胞AQP-3、MMP-9蛋白 表达和细胞侵袭力的影响。 结果 与空白组比较,25、50、100 μmol/L丙泊酚24 h 处理组对AQP-3 mRNA表达的最大抑制比 值为0.13,最小0.41;12 h处理组最大抑制比值0.19,最小0.65,差异有统计学意义(P<0.05);丙泊酚100 μmol/L组24 h达到最 大抑制效果(0.13±0.035)。25、50、100 μmol/L 丙泊酚24 h处理组AQP-3蛋白表达(0.91±0.009,0.60±0.020,0.57±0.006)和50、 100 μmol/L丙泊酚24 h处理组MMP-9蛋白表达(0.65±0.006,0.46±0.021),较空白组明显降低(P<0.05)。25、50、100 μmol/L丙泊酚 24 h 处理组的穿膜细胞数(122.55±17.20,96.33±5.82,74.33±2.85),较空白组(199.33±23.88)明显减少(P<0.05)。 结论 丙泊酚 50、100 μmol/L处理24 h,可下调人肺癌A549细胞AQP-3 mRNA、AQP-3蛋白和MMP-9蛋白的表达,抑制A549细胞的侵袭力。
关键词: 丙泊酚    水通道蛋白3    基质金属蛋白酶9    A549    侵袭力    
Propofol suppresses invasion of human lung cancer A549 cells by down-regulating aquaporin-3 and matrix metalloproteinase-9
YE Huijin, BAI Jianjie, GUO Peipei, WANG Wei, LIN Chunshui     
Department of Anesthesiology, Nanfang Hospital, Southern Medical University, Guangzhou 510515, China
Abstract: Objective To investigate the effect of propofol on cell invasion and expressions of aquaporin-3 (APQ-3) and matrix metalloproteinase-9 (MMP-9) in human lung adenocarcinoma cancer A549 cells. Methods A549 cells were treated with propofol at the concentrations of 25, 50, and 100 μmol/L for 12 or 24 h. RT-PCR was used to detect the effect of propofol on AQP-3 mRNA level in A549 cells, and the effects of propofol treatments for 24 h on AQP-3 and MMP-9 protein expression and the invasive ability of A549 cells were assessed with Western blotting and Transwell assay, respectively. Results Compared with the control cells, the cells treated with 25, 50, and 100 μmol/L propofol showed a obvious inhibition of AQP-3 mRNA expression, with inhibition rates ranging from 0.19 to 0.65 in cells with a 12-h treatment and from 0.13 to 0.41 in cells treated for 24 h; 100 μmol/L propofol treatment for 24 h produced the strongest inhibitory effect (0.13±0.035, P<0.05). AQP-3 protein expression in cells treated with 25, 50, and 100 μmol/L propofol for 24 h (0.91±0.009, 0.60±0.020, and 0.57±0.006, respectively) and MMP-9 protein expression in cells treated with 50 and 100 μmol/L propofol for 24 h (0.65 ± 0.006 and 0.46 ± 0.021, respectively) were significantly lower than those in the control cells (P<0.05). Treatment with 25, 50, and 100 μmol/L propofol for 24 significantly lowered the number of invading cells (122.55 ± 17.20, 96.33 ± 5.82, and 74.33 ± 2.85, respectively) compared with the control group (199.33±23.88, P<0.05). Conclusion Treatment with 50 and 100 μmol/L propofol inhibits cell invasion by down-regulating the expression of AQP-3 and MMP-9 in A549 cells.

常用的静脉麻醉药丙泊酚对宫颈癌、纤维肉瘤、骨肉瘤、黑色素瘤、结肠癌、乳腺癌等多种肿瘤细胞的侵袭力有抑制作用[1-3]。水通道蛋白家族(AQPs)是一类介导跨膜水运输的内在蛋白[4],其中AQP-3在非小细胞肺癌(NSCLC)和肺腺癌细胞中高表达[5-6]。基质金属蛋白酶(MMPs)是一类以无活性酶原形式分泌的Zn2+±赖的肽链内切酶,其中MMP-9即明胶酶B被认为是肺癌细胞侵袭和转移的重要分子,在NSCLC患者的血清、肺组织中MMP-9 高表达[7-9]。研究表明,丙泊酚能抑制肺癌A549细胞AQP-1的表达,抑制其生长和迁移[10];AQP-3可参与早期肺腺癌发展过程、调节肺癌细胞生物学功能[11]。丙泊酚对A549细胞AQP-3和MMP-9表达的影响尚不清楚。本研究通过观察丙泊酚对人肺癌A549细胞侵袭力及AQP-3、MMP-9 的影响,探讨丙泊酚对A549细胞的作用及机制。

1 材料和方法 1.1 材料 1.1.1 实验细胞人肺腺癌A549细胞来源于南方医科

大学珠江医院肿瘤科实验室,A549细胞用10%胎牛血清DMEM/F12培养基,在37℃、5% CO2恒温培养箱培养,每2~3d换液。选择对数生长期的A549细胞用于实验。

1.1.2 主要试剂

DEME/F12 培养基购于HyClone,胎牛血清购于Gibco,PCR引物由上海英潍捷基公司合成,β-actin、AQP-3 抗体购自Abcam;MMP-9 抗体购自CST,山羊抗兔IgG二抗购于Jackson,丙泊酚纯品、二甲基亚砜(DMSO)、CuSO4 分析纯级购于Sigma,Transwell小室和Matrix基质胶购于Corning。

1.2 实验方法 1.2.1 实验分组

实验分6组:空白对照组(C组),加入等体积的PBS;DMSO溶剂组(D组),加入同体积的DMSO溶剂,总浓度不超过0.1%;丙泊酚分为25 μmol/L(P25组)、50 μmol/L(P50组)、100 μmol/L(P100组);AQP-3抑制剂CuSO4组(Cu组500μmol/L。

1.2.2 荧光定量PCR检测AQP-3 mRNA

按丙泊酚作用时间和剂量分为10组:时间分组为12 h组和24 h组,剂量分组为C组、D组、P25组、P50组、P100组。细胞株传代培养3 d,加药物刺激作用后收集细胞。用RNA提取试剂盒提取细胞总RNA,取1 μg RNA进行逆转录42℃,2min。取适量cDNA产物进行荧光定量PCR,扩增条件95 ℃持续5 s,60 ℃持续60s,共40个循环。PCR引物序列从GeneBank 数据库中查找:AQP-3 上游引物${{5}^{'}}$-TCAATGGCTTCTTTGACCAGTTCA-${{3}^{'}}$,下游引物${{5}^{'}}$-CTTCACATGGGCCAGCTTCACATT-${{3}^{'}}$;β-actin上游引物${{5}^{'}}$-CATGTACGTTGCTATCCAGGC-${{3}^{'}}$,下游引物${{5}^{'}}$-CTCCTTAATGTCACGCACGAT-${{3}^{'}}$。以β-actin作为内参基因,计算AQP-3 mRNA 的相对表达量(β-actin/AQP-3),用2-ΔΔCT来评价目标mRNA的表达水平。β-actin可用来校加样误差。

1.2.3 Western Blot检测AQP-3和MMP-9蛋白

按上述丙泊酚作用时间和剂量分为10组,加500 μmol/LCuSO4 2 h处理组(Cu组)。收集处理过的细胞,提取总蛋白,BCA 法测蛋白浓度,计算上样量。制备12%SDS-PAGE凝胶,每孔加50 μg蛋白样品,进行电泳。转膜后,5%脱脂奶粉封闭1 h,1%TBST洗膜3次,加入一抗AQP-3(1∶200)、MMP-9(1∶500)、β-actin(1∶1000),共同孵育4 ℃恒温过夜。洗膜后于左右摇床上室温孵育二抗(山羊抗兔抗体:1∶3000),2 h。采用ECL发光试剂盒发光、显影,使用凝胶图像分析系统采集图像,图像采集后使用Image J软件处理系统分析目标条带的光密度值。

1.2.4 Transwell小室检测细胞侵袭力

饥饿A549细胞24 h后,按上述实验分组处理细胞,消化收集,调整细胞悬液浓度为5×105/mL。每个上室加入200 μL细胞悬液,下室加入含10%胎牛血清的培养基,放入37 ℃,5%CO2的细胞培养箱中孵育24 h。用棉签擦去上室内面的细胞和基质胶,无水甲醇固定20 min,PBS洗涤,风干后0.1%结晶紫染色细胞20 min,PBS洗涤3~4次。棉签擦净残留在小室内壁的细胞和液体,静置待小室风干。将Transwell 小室膜朝上,在200倍镜的正置显微镜下观察,随机选5个视野,计数细胞数。

1.2.5 统计学方法

用SPSS 20.0统计软件分析,计量资料以均数±标准差表示。实验结果数据采用单因素方差分析。组间两两比较:方差齐采用LSD分析,方差不齐用Dunnet${{\text{t}}^{'}}$sT3分析。P<0.05认为差异有统计学意义。

2 结果 2.1 丙泊酚对A549细胞AQP-3 mRNA和蛋白表达的影响

AQP-3 mRNA变化与C组的比值分别为:D12h组0.91±0.015,D24h组0.78±0.020,P25~12h组0.65±0.027,P25~24h组0.41±0.031,P50~12h组0.52±0.047,P50~24h组0.25±0.071,P100~12h组0.19±0.027,P100~24h组0.13±0.035。除D12h组,其余组与空白组比较,差异均有统计学意义(P<0.05,图 1A)。AQP-3蛋白表达变化与空白组的比值分别为:D24 h组0.78±0.025,P25~24 h组0.91±0.009,P50~24 h组0.60±0.020,P100~24 h组0.57±0.006,Cu组0.51±0.074。与空白组比较各组差异均有统计学意义(P<0.05,图 1B图 C)。P50~24 h组、P100~24 h组和Cu组AQP-3蛋白表达明显下降,3者间无显著性差异。

图 1 丙泊酚对A549细胞AQP-3 mRNA和蛋白表达的影响 Figure 1 Effect of propofol on AQP-3 expressionin A549 cells.A: AQP-3 mRNA expression in A549 cells; B, C: AQP-3protein expression in A549 cells treated with propofol for24 h. *P<0.05 vs control cells; #P<0.05 vs CuSO4 group.
2.2 丙泊酚对A549细胞MMP-9蛋白表达的影响

与空白组比较,D组(1.28±0.011)和P25~24 h组(1.12±0.014)MMP-9 蛋白表达有所增加。P50~24 h组(0.65 ±0.006)、P100~24 h组(0.46±0.021)MMP-9蛋白水平较对照组相比表达量有显著下降(P<0.05),两处理组间差异有统计学意义。并且与Cu组(0.94±0.023)比较,P50~24 h组、P100~24 h组对A549 细胞MMP-9蛋白表达抑制作用明显增加,且差异有统计学意义(P<0.05,图 2)。

图 2 丙泊酚对A549细胞MMP-9蛋白表达的影响 Figure 2 Effect of propofol on MMP-9 protein expression in A549 cells. A: Protein expression of MMP-9 in A549 cells treated with propofol for 24 h measured by Western blotting; B: Quantitative analysis of MMP-9 protein level in A549 cells treated with propofol for 24 h. *P<0.05 vs control group; #P<0.05 vs CuSO4 group
2.3 丙泊酚对A549细胞侵袭力的影响

不同浓度丙泊酚处理24 h对A549细胞的侵袭力均有抑制作用。随丙泊酚作用浓度增加,其对侵袭力的抑制增强。A549 细胞各实验组穿膜数分别为C 组199.33±23.88,D组146.22±14.82,P25组122.55±17.20,P50组96.33±5.82,P100组74.33±2.85。细胞侵袭抑制比值分别为:D组73.36%、P25组61.48%、P50组48.33%、P100组37.29%。各处理组和对照组比较差异均有统计学意义(P<0.05,图 3)。

图 3 Transwell侵袭实验检测A549细胞侵袭力 Figure 3 Invasion of A549 cells evaluated by Transwell invasion assay. A: Cells treated with propofol for 24 h. The invasive cells were stained with crystal violet (Original magnification: ×200); B: Number of invasive cells. *P<0.01 vs control group; #P<0.01 CuSO4 group.
2.4 CuSO4对A549细胞侵袭力的影响

Cu组使用500 μmol/L CuSO4,处理2 h,Transwell实验C组和Cu组穿膜细胞数分别为199.33±19.75 和103.11±13.68,差异有统计学意义(P<0.05,图 3)。

2.5 CuSO4对A549 细胞AQP-3和MMP-9蛋白表达的影响

Cu组AQP-3 和MMP-9 蛋白表达与空白组比较,分别为0.51±0.074 和0.94±0.023,差异有统计学意义(P<0.05,图 4)。

图 4 CuSO4对A549细胞AQP-3、MMP-9蛋白表达的影响 Figure 4 Effect of CuSO4 on protein expression of AQP-3 and MMP-9 in A549 cells. A: Results of Western blotting; B: Quantitative analysis of AQP-3 and MMP-9 protein level in A549 cells. *P<0.05 vs control group.
3 讨论

AQPs是一类跨膜转运通道蛋白,根据其通透性不同分为水通道和水-甘油通道两类,AQP-3 属于后者。AQPs与肿瘤细胞的增殖、侵袭迁移力和血管生成有密切关系[12]。在NSCLC中尤其是肺腺癌和高分化乳头状支气管肺泡癌中,AQP-3高表达[5, 11-12]。研究表明,丙泊酚通过降低AQPs的表达,发挥其器官保护作用:丙泊酚可减少AQP-4、MMP-9及pJNK的表达,减缓脑缺血再灌注损伤[13];可以减少神经胶质瘤术后脑水肿患者AQP-4 的表达[14];还可下调LPS引起的AQP-2、TNF-α和ICAM-1的表达,对内毒素引起的肺损伤和肾损伤有保护作用[15]。另有研究发现,丙泊酚能抑制A549肿瘤细胞AQP-1的表达,对A549细胞的生长、迁移有明显抑制作用,并诱导肿瘤细胞的凋亡[10];AQP-3可能参与早期肺腺癌发展过程、调节肺癌细胞生物学功能[11]。迄今,丙泊酚对A549肿瘤细胞(非小细胞肺癌)AQP-3作用的影响,尚未明确。本研究,采用体外培养人肺腺癌A549 细胞株,测定不同浓度和作用时间的丙泊酚对A549细胞AQP-3 mRNA和蛋白表达的影响。结果发现,12 h和24 h丙泊酚低、中、高剂量组AQP-3 mRNA表达均明显减少,24 h丙泊酚低、中、高剂量组AQP-3蛋白表达均明显减少,表明丙泊酚对人肺癌A549 细胞AQP-3的表达有抑制作用,且呈时间-剂量依赖性。

MMPs可以降解、破坏基底膜和细胞外基质(ECM),促进血管表面生长因子的释放参与肿瘤血管形成和肿瘤生长[16],其中MMP-2和MMP-9与多种肿瘤的侵袭转移关系最为密切[17]。MMP-9以酶原形式分泌至胞外,主要存在于单核-巨噬细胞内,在恶性细胞株中的表达增加与肿瘤细胞的转移能力相关[18]。MMP-9被认为是肺癌细胞侵袭和转移的重要分子,NSCLC患者的血清、肺组织中MMP-9水平显著增高[7-8]。抑制肺癌细胞MMP-9的表达,能够减少肺癌早期转移并且可破坏肿瘤的脉管系统,达到抗肿瘤的作用[19]。Meta分析表明,非小细胞肺癌MMP-9免疫组化染色结果阳性的患者5年生存率低于结果阴性者[9],提示MMP-9在NSCLC患者预后中的重要作用。本研究,中、高剂量丙泊酚组(50、100 μmol/L)MMP-9蛋白表达明显减少,表明丙泊酚可以抑制人肺癌A549细胞MMP-9蛋白表达,然低剂量丙泊酚组(25 μmol/L)的MMP-9蛋白表达较C组增加。有研究报道,丙泊酚34 μmol/L可以促进人乳腺癌MDA-MB-468 细胞迁移[20];丙泊酚0~40 μmol/L呈剂量-时间±赖性促进胆囊癌GBC-SD细胞增殖、侵袭,并抑制细胞凋亡[21];低剂量(15、20、25 μg/mL)丙泊酚处理24 h对A549细胞MMP-9蛋白表达为促进作用,而处理48 h为抑制作用[22]。可见,中、高剂量的丙泊酚对肿瘤细胞侵袭力的抑制作用更确切,低剂量的丙泊酚对肿瘤细胞侵袭转移能力的影响有待进一步验证。除剂量因素外,丙泊酚对不同肿瘤细胞侵袭转移能力的影响是否不同,值得探讨。

对其作用机制的研究发现,敲除人非小细胞肺癌A549细胞的AQP-3基因,可以通过AKT/MMPs途径降低肺癌细胞的侵袭力,并且AQP-3表达下调能抑制肿瘤细胞甘油摄取和线粒体ATP生成[23];可以延迟肿瘤细胞的生长,可能与阻止HIF-1α/VEGF和Raf/MEK/ERK信号通路有关[24]。本研究表明,丙泊酚50、100 μmol/L处理24 h,可下调人肺癌A549 细胞AQP-3 mRNA、AQP-3 蛋白和MMP-9 蛋白的表达,抑制A549 细胞的侵袭力。但是,丙泊酚是否通过下调AQP-3表达影响AKT和ERK信号通路,从而抑制人肺癌A549 细胞的MMPs表达和细胞侵袭力,其作用机制还有待深入研究。CuSO4 是AQP-3 特异性抑制剂[25],500 μmol/LCuSO4作用2 h可明显抑制肿瘤细胞的侵袭力和AQP-3的蛋白表达[26-30]。本实验CuSO4组明显减少肺腺癌A549细胞AQP-3和MMP-9蛋白的表达,对A549细胞的侵袭力有明显的抑制作用,进一步说明通过减少肺癌A549细胞的AQP-3表达可以抑制MMP-9表达和肿瘤细胞的侵袭力。

本研究表明,50、100 μmol/L丙泊酚可下调人肺腺癌A549细胞AQP-3和MMP-9的表达,抑制A549细胞的侵袭,为肿瘤手术患者麻醉方式和药物的选择提供实验±据。关于丙泊酚下调A549细胞AQP-3和MMP-9表达的具体机制、通路,以及丙泊酚对肿瘤转移机制的动物实验、临床观察,均值得进一步探讨。

参考文献
[1] Song J, Shen Y, Zhang J, et al. Mini profile of potential anticancer properties of propofol[J]. PLoS One,2014, 9 (12) : e114440. DOI: 10.1371/journal.pone.0114440. (0)
[2] Mammoto T, Mukai M, Mammoto A, et al. Intravenous anesthetic, propofol inhibits invasion of cancer cells[J]. Cancer Lett,2002, 184 (2) : 165-70. DOI: 10.1016/S0304-3835(02)00210-0. (0)
[3] Garib V, Niggemann B, Z?nker KS, et al. Influence of non-volatile anesthetics on the migration behavior of the human breast cancer cell line MDA-MB-468[J]. Acta Anaesthesiol Scand,2002, 46 (7) : 836-44. DOI: 10.1034/j.1399-6576.2002.460714.x. (0)
[4] Denker BM, Smith BL, Kuhajda FP, et al. Identification, purification, and partial characterization of a novel Mr 28 000 integral membrane protein from erythrocytes and renal tubules[J]. J Biol Chem,1988, 263 (30) : 15634-42. (0)
[5] Warth A, Muley T, Meister M, et al. Loss of aquaporin-4 expression and putative function in non-small cell lung cancer[J]. BMC Cancer,2011, 11 (3) : 161. (0)
[6] Machida Y, Ueda Y, Shimasaki M, et al. Relationship of aquaporin 1, 3, and 5 expression in lung cancer cells to cellular differentiation, invasive growth, and metastasis potential[J]. Hum Pathol,2011, 42 (5) : 669-78. DOI: 10.1016/j.humpath.2010.07.022. (0)
[7] Iniesta P, Morán A, De Juan C, et al. Biological and clinical significance of MMP-2, MMP-9, TIMP-1 and TIMP-2 in non-small cell lung cancer[J]. Oncol Rep,2007, 17 (1) : 217-23. (0)
[8] Leinonen T, Pirinen R, B?hm J, et al. Expression of matrix metalloproteinases 7 and 9 in non-small cell lung cancer. Relation to clinicopathological factors, beta-catenin and prognosis[J]. Lung Cancer,2006, 51 (3) : 313-21. DOI: 10.1016/j.lungcan.2005.11.002. (0)
[9] Peng WJ, Zhang JQ, Wang BX, et al. Prognostic value of matrix metalloproteinase 9 expression in patients with non-small cell lung cancer[J]. Clin Chim Acta,2012, 413 (13/14) : 1121-6. (0)
[10] 赵佳, 刘东雷, 杨洋, 等. 丙泊酚对肺癌A549细胞凋亡的影响及其机 制[J]. 中华实验外科杂志,2015, 32 (4) : 792-4. (0)
[11] Liu YL, Matsuzaki T, Nakazawa T, et al. Expression of aquaporin 3 (AQP3) in normal and neoplastic lung tissues[J]. Hum Pathol,2007, 38 (1) : 171-8. DOI: 10.1016/j.humpath.2006.07.015. (0)
[12] Wang J, Feng L, Zhu Z, et al. Aquaporins as diagnostic and therapeutic targets in cancer: how far we are[J]. ? J Transl Med,2015, 13 (4) : 96. (0)
[13] Ji FT, Liang JJ, Miao LP, et al. Propofol postconditioning protects the blood brain barrier by decreasing matrix metalloproteinase9 and aquaporin4 expression and improves the neurobehavioral outcome in a rat model of focal cerebral ischemiareperfusion injury[J]. Mol Med Rep,2015, 12 (2) : 2049-55. (0)
[14] Yang WC, Zhou LJ, Zhang R, et al. Effects of propofol and sevoflurane on aquaporin-4 and aquaporin-9 expression in patients performed gliomas resection[J]. Brain Res,2015, 1622 (8) : 1-6. (0)
[15] Cui WY, Tian AY, Bai T. Protective effects of propofol on endotoxemia-induced acute kidney injury in rats[J]. Clin Exp Pharmacol Physiol,2011, 38 (11) : 747-54. DOI: 10.1111/j.1440-1681.2011.05584.x. (0)
[16] Jodele S, Chantrain CF, Blavier L, et al. The contribution of bone marrow-derived cells to the tumor vasculature in neuroblastoma is matrix metalloproteinase-9 dependent[J]. Cancer Res,2005, 65 (8) : 3200-8. (0)
[17] 方伟岗, 李红梅, 孔灵玲, 等. 肿瘤侵袭转移过程中基质金属蛋白酶作 用机制系列研究[J]. 北京大学学报: 医学版,2003, 35 (4) : 441-3. (0)
[18] Baruch RR, Melinscak H, Lo J, et al. Altered matrix metalloproteinase expression associated with oncogene-mediated cellular transformation and metastasis formation[J]. Cell Biol Int,2001, 25 (5) : 411-20. DOI: 10.1006/cbir.2000.0647. (0)
[19] Rao JS, Gondi C, Chetty C, et al. Inhibition of invasion, angiogenesis, tumor growth, and metastasis by adenovirusmediated transfer of antisense uPAR and MMP-9 in non-small cell lung cancer cells[J]. Mol Cancer Ther,2005, 4 (9) : 1399-408. DOI: 10.1158/1535-7163.MCT-05-0082. (0)
[20] Garib V, Lang K, Niggemann B, et al. Propofol-induced Calcium signalling and actin reorganization within breast carcinoma cells[J]. Eur J Anaesthesiol,2005, 22 (8) : 609-15. DOI: 10.1017/S026502150500102X. (0)
[21] Zhang L, Wang N, Zhou S, et al. Propofol induces proliferation and invasion of gallbladder cancer cells through activation of Nrf2[J]. J Exp Clin Cancer Res,2012, 31 (8) : 66. (0)
[22] Wu KC, Yang ST, Hsia TC, et al. Suppression of cell invasion and migration by propofol are involved in down-regulating matrix metalloproteinase-2 and p38 MAPK signaling in A549 human lung adenocarcinoma epithelial cells[J]. Anticancer Res,2012, 32 (11) : 4833-42. (0)
[23] Xia H, Ma YF, Yu CH, et al. Aquaporin 3 knockdown suppresses tumour growth and angiogenesis in experimental non-small cell lung cancer[J]. Exp Physiol,2014, 99 (7) : 974-84. DOI: 10.1113/eph.2014.99.issue-7. (0)
[24] Hou SY, Li YP, Wang JH, et al. Aquaporin-3 inhibition reduces the growth of NSCLC cells induced by hypoxia[J]. Cell Physiol Biochem,2016, 38 (1) : 129-40. DOI: 10.1159/000438615. (0)
[25] Zelenina M, Tritto S, Bondar AA, et al. Copper inhibits the water and glycerol permeability of aquaporin-3[J]. J Biol Chem,2004, 279 (50) : 51939-43. DOI: 10.1074/jbc.M407645200. (0)
[26] Li A, Lu D, Zhang Y, et al. Critical role of aquaporin-3 in epidermal growth factor-induced migration of colorectal carcinoma cells and its clinical significance[J]. Oncol Rep,2013, 29 (2) : 535-40. (0)
[27] Ji C, Cao C, Lu S, et al. Curcumin attenuates EGF-induced AQP3 up-regulation and cell migration in human ovarian cancer cells[J]. Cancer Chemother Pharmacol,2008, 62 (5) : 857-65. DOI: 10.1007/s00280-007-0674-6. (0)
[28] Cao XC, Zhang WR, Cao WF, et al. Aquaporin3 is required for FGF-2-induced migration of human breast cancers[J]. PLoS One,2013, 8 (2) : e56735. DOI: 10.1371/journal.pone.0056735. (0)
[29] 李昂, 方育, 李嘉, 等. 表皮生长因子调节水通道蛋白3表达对结肠 癌细胞迁移能力的影响[J]. 现代肿瘤医学,2012, 20 (8) : 1557-60. (0)
[30] 杨泉涌, 张颖, 张伟然, 等. 水通道蛋白3在表皮生长因子诱导的乳腺 癌细胞迁移中的作用机制研究[J]. 中华乳腺病杂志: 电子版,2012, 6 (6) : 640-8. (0)