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  南方医科大学学报  2006, Vol. 36Issue (9): 1198-1203  DOI: 10.3969/j.issn.1673-4254.2016.09.06.
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习明明, 刘晶, 谢亮, 宫剑滨. 比索洛尔预处理对缺氧/复氧诱导的H9c2细胞损伤的影响[J]. 南方医科大学学报, 2006, 36(9): 1198-1203. DOI: 10.3969/j.issn.1673-4254.2016.09.06.
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XI Mingming, LIU Jing, XIE Liang, GONG Jianbin. Effects of bisoprolol pretreatment on hypoxia/reoxygenation-induced injury in H9c2 cardiomyocytes[J]. Journal of Southern Medical University, 2006, 36(9): 1198-1203. DOI: 10.3969/j.issn.1673-4254.2016.09.06.
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基金项目

国家自然科学基金(81400238)

作者简介

习明明,硕士研究生,住院医师,E-mail:xmm.1990-711@163.com

通信作者

宫剑滨,教授,博士生导师,主任医师,E-mail: agong62@126.com

文章历史

收稿日期:2016-03-15
比索洛尔预处理对缺氧/复氧诱导的H9c2细胞损伤的影响
习明明1, 刘晶2, 谢亮2, 宫剑滨2     
1. 泰州市人民医院内科,江苏 泰州 225300 ;
2. 南京大学医学院附属金陵医院(南京军区南京总医院)心脏内科,江苏 南京 210002
摘要: 目的 研究比索洛尔预处理对缺氧/复氧诱导的大鼠心肌细胞损伤的保护作用,并探讨该作用的机制。 方法 对大鼠心肌细 胞株(H9c2)进行缺氧复氧(6 h/2 h),模拟大鼠心肌缺血再灌注损伤模型,将H9c2细胞随机分成4组:正常对照组(control组)、缺 氧/复氧组(H/R组)、缺氧/复氧+比索洛尔预处理组(H/R+B组)、缺氧/复氧+比索洛尔预处理+PI3K/AKT阻滞剂LY294002组(H/ R+B+LY组);分别采用MTT法检测心肌细胞活力,流式细胞仪法检测心肌细胞凋亡、ROS水平,Western免疫印迹法检测心肌 细胞p-AKT及p-GSK3β蛋白表达情况。 结果 与正常组相比,H/R组细胞活力下降,细胞凋亡率增加、ROS水平升高;经比索洛 尔预处理后,细胞活力明显提高,细胞凋亡率下降、活性氧水平降低,p-AKT/GAPDH、p-GSK3β/GAPDGH显著提高,而加入 PI3K/AKT阻滞剂LY294002后比索洛尔的保护作用消失。 结论 比索洛尔能减少缺氧/复氧所引起的氧化应激,对心肌细胞具 有明显的保护作用,其作用机制是通过激活PI3K/AKT/GSK3β通路而提高AKT、GSK3β磷酸化水平,减少ROS产生,增加细胞 的活性实现的。
关键词: 比索洛尔    缺氧/复氧损伤    H9c2    心肌保护    PI3K/AKT    GSK3β    
Effects of bisoprolol pretreatment on hypoxia/reoxygenation-induced injury in H9c2 cardiomyocytes
XI Mingming1, LIU Jing2, XIE Liang2, GONG Jianbin2     
1. Department of Cardiology, Taizhou People's Hospital, Taizhou 225300, China ;
2. Department of Cardiology, Jinling Hospital, Nanjing University School of Medicine/Nanjing General Hospital of Nanjing Military Command, Nanjing 210002, China
Abstract: Objective To investigated the effects of bisoprolol pretreatment on hypoxia/reoxygenation (H/R)-induced injury in H9c2 cardiomyocytes. Methods Cultured H9c2 cells were exposed to hypoxia for 6 h followed by reoxygenation for 2 h with or without pretreatments with bisoprolol or bisoprolol +LY294002. The cell survival was measured by MTT assay, and the cell apoptosis and levels of radical oxygen species (ROS) were evaluated with flow cytometry. The protein levels of phosphyorylated AKT and phosphorylated GSK3β in the cells were determined by Western blotting. Results Compared with the normal control cells, the cells exposed to H/R injury showed significantly decreased cell survival and increased cell apoptosis and ROS production; pretreatment of the cells with bisoprolol significantly decreased the cell apoptotic rates and ROS production and obviously enhanced the cell survival and protein levels of p-AKT and p-GSK3β in the exposed cells. The protective effect of bsioprolol against H/R-induced cell injury was significantly attenuated by LY294002. Conclusion Bisoprolol can protect H9c2 cells against H/R-induced injury and oxidative stress by activating PI3K/AKT/Gsk-3β pathway to increase the phosphorylation of AKT and GSK3β and reduce ROS production.

再灌注治疗是急性心肌梗死最为有效的治疗手段,随着冠状动脉搭桥术(CABG)、经皮冠状动脉成形术(PTCA)等血管再通术的迅速开展,急性心肌梗死(AMI)的再灌注治疗出现了一个飞跃[1]。但是,开通的罪犯血管带来的血液再灌注本身亦可以造成心肌细胞损伤,称为心肌缺血再灌注损伤(myocardial ischemiareperfusioninjury,MIRI)[2]。心肌缺血再灌注过程中,再灌注损伤挽救激酶信号通路(RISK)被激活,包括磷脂酰肌醇-3激酶(PI3K)、蛋白激酶B(PKB,又称AKT)、内皮一氧化氮合成酶(eNOS)、ERK1/2、PKC、JAKSTAT[3]等。其中PI3K/AKT和其下游的GSK-3β信号通路是心肌缺血再灌注损伤信号传递的重要通路,具有很多保护性的调控作用[4]。心肌缺血再灌注过程中,心肌细胞表面β受体大量表达,尤其是β1受体的激活会引起心肌细胞胞内ROS产生增多、心肌细胞大量凋亡[5]。比索洛尔是一种高选择性的β1受体阻滞剂,它可以特异性阻断缺血再灌注过程中β1受体的激活,降低交感神经活性,从而发挥其抗氧化和凋亡作用[6]。研究表明,STEMI发病6 h内行直接PCI治疗前静脉应用美托洛尔明显缩小梗死面积,提升左室射血分数,而不增加不良事件[7-8]。近期又有研究表明,AMI后早期应用β受体阻滞剂并不能改善患者后期心脏功能[9-10]。因此本实验通过建立心肌细胞缺氧/复氧模型,模拟心肌缺血再灌注损伤,探讨β受体阻滞剂预处理对心肌缺血再灌注损伤的保护作用,并运用特异性PI3K/AKT 通道抑制剂LY294002 探究β1 受体阻断发挥作用与PI3K/AKT/GSK-3β通路的关系。

1 材料和方法 1.1 材料

H9c2 心肌细胞(美国ATCC细胞库);SDS-PAGE电泳液(碧云天);BCA试剂盒(碧云天);DMEM高糖培养基(Gibco BRL);胎牛血清(Gibco BRL);SDS裂解液(碧云天);比索洛尔(大连美仑生物技术公司);MTT(南京萌邦生物),Annerxin V FITC细胞凋亡检测试剂盒(Biouniquer公司);活性氧检测试剂盒(碧云天);兔抗大鼠磷酸化AKT抗体(p-AKT Ser473)(Cell signalingTechnology);兔抗大鼠磷酸化抗体(p-GSK3β)(Cellsignaling Technology);GAPDH(1A6)单克隆抗体-HRP(南京巴奥德生物)。

1.2 方法 1.2.1 H9c2细胞系培养

将H9c2细胞接种于25 mL培养瓶中,用含10%胎牛血清的高糖DMEM培养基,37 ℃、5% CO2培养箱(95%空气)中培养,待细胞生长融合至80%左右用0.25%胰酶消化传代1次,分别接种于96孔或6孔培养板中,取对数生长期细胞进行实验。

1.2.2 细胞缺氧/复氧(Hypoxia/Reoxygenation,H/R)模型的构建

建模前预先将三气培养箱参数调至:37 ℃、94%N2、5%CO2、1%O2状态。参照文献[11],配置改进缺氧液(NaH2PO4 2.6 mmol/L、NaHCO3 26.2 mmol/L、CaCl21.8 mmol/L、MgSO4 0.8 mmol/L、HEPES 20.1 mmol/L、NaCl 116.4 mmol/L、KCl 5.4 mmol/L),将细胞板内正常培养液换成等量的缺氧液后,把细胞培养板换至三气培养箱中(94% N2、5% CO2、1% O2)进行缺氧6 h处理,后再将缺氧液换成新鲜的10% FBS DMEM溶液,在正常培养条件下,复氧2 h。

1.2.3 实验分组

将正常培养的H9c2 细胞随机分成4组:正常培养组(control组):37 ℃、5% CO2、95%空气培养箱中正常培养;缺氧/复氧组(H/R组):按照上述构建模型;缺氧/复氧+比索洛尔组(H/R+B组):于缺氧前30 min在无血清培养基中加入终浓度为2 μmol/L的比索洛尔构建模型;缺氧/复氧+比索洛尔组+PI3K/AKT特异性阻断剂LY294002组(H/R+B+LY组):缺氧前1 h在无血清培养基中加入25 μmol/L LY294002 余后处理同H/R+B组。

1.2.4 MTT法测定H9c2细胞活力

将细胞接种于96孔培养板中,待细胞生长状态良好、融合至80%左右随机按实验分组处理,每孔中加入20 μL MTT(5 mg/mL),继续培养4 h 后,轻轻弃去上层液体,每孔中加入DMSO100 μL,振荡10 min后,采用多功能酶标仪检测各孔中吸光度A值(检测波长570 nm)。细胞活力=(对照组A值-实验组A值)/对照组A值×100%。

1.2.5 Annexin V-FITC/PI双标法及流式细胞仪检测细胞凋亡

取处理过的各组6孔培养板细胞,先将其上层培养液分别收集于1.5 mL EP管中,用0.25%的胰酶消化贴壁细胞,并收集于对应的EP管中,4 ℃、1000 r/min离心5 min,然后用预冷的PBS洗涤细胞1次,用195 μLAnnexin V-FITC结合液轻轻重悬细胞。各样品分别加入5 μL Annexin V-FITC,轻轻混匀,再加入5 μL PI,用铝箔包裹样品,避光室温反应20 min,置于冰浴中,随即进行检测。经流式细胞仪分析结果判断:左下象限B3显示活细胞(FITC/PI);左上象限B1显示死亡细胞;右上象限B2显示晚期凋亡细胞;右下象限B4显示早期凋亡细胞,凋亡率=B2+B4。

1.2.6 荧光探针法及流式细胞仪检测细胞活性氧(ROS)水平

取处理过的各组6 孔培养板,轻轻吸去培养基后,用PBS 清洗1 次,加入按1∶1000 无血清培养液稀释的DCFH-DA1 mL,37 ℃细胞培养箱内孵育20 min,再用预冷的PBS 轻轻洗涤细胞3 次,用0.25% EDTA胰酶消化贴壁细胞,终止消化,收集于1.5 mL EP 管中,4 ℃、1000 r/min 离心,吸去上清液后,洗涤1 次,在用200 μL PBS 缓冲液重悬细胞,随即用流式细胞仪进行检测(激发波长525 nm 发射波长488 nm)各组细胞阳性率。

1.2.7 Western blotting检测蛋白表达水平

取各组处理后的6 孔板H9c2 细胞,以预冷的PBS洗涤3 次后加入80 μL含PMSF的细胞裂解液(按1∶100 稀释,使用前5 min 配置),进行蛋白定量,加入上样缓冲液,放入100 ℃水浴中煮沸5 min,使蛋白变性;配置好10%的分离胶和5%的浓缩胶后,进行上样,电泳完成后再用300 mA恒定电流进行转膜90 min,封闭1 h,继续孵一抗过夜,TBST缓冲液清洗3 次后,孵二抗1 h,再次用TBST清洗3次,化学发光仪进行检测。用UVP 软件分析照片中蛋白的吸光度值A值,以靶蛋白A值/GAPDHA值的比值反映靶蛋白相对水平。

1.3 统计学处理

Western blotting结果采用单因素方差分析,均满足方差齐性检验,两两比较时用LSD法。数据以均数±标准差表示,采用SPSS 19.0统计软件进行单因素方差分析各组间均数两两比较。

2 结果 2.1 比索洛尔对缺氧复氧H9c2细胞保护作用最佳浓度确定

为了确定比索洛尔对H9c2心肌细胞缺氧复氧损伤保护作用的最佳浓度,本实验用MTT法检测心肌细胞活力结果显示(表 1):与对照组相比,H/R组细胞活力明显下降(P<0.01);而比索洛尔预处理组较H/R组细胞活力明显提高(P<0.05),并且0.2、2、20 μmol/L的比索洛尔预处理均能提高心肌细胞活力,而2 μmol/L的比索洛尔保护作用最明显(P<0.05)。

表 1 不同浓度比索洛尔预处理对细胞活力影响 Table 1 Effects of pretreatment with different concentrations of bisoprolol on cell viability
2.2 LY294002比索洛尔预处理的缺氧复氧H9c2心肌细胞活力的影响

比索洛尔预处理的细胞活力明显高于H/R 组[(74.7 ± 7.4)% vs(54.2 ± 6.2)%,P<0.05),给予PI3K/AKT特异性阻断剂LY294002后,与H/R+B组比较,H/R+B+LY组细胞活力明显下降[(53.7±5.3)% vs(74.7±7.4)%,P<0.05]。H/R组与H/R+LY294002组比较无明显差异(P<0.05,表 2)。

2.3 各个分组细胞凋亡水平检测

用流式细胞仪检测细胞凋亡情况如下:与control组相比,H/R 组细胞凋亡明显升高[(7.6±1.28)% vs(0.6±0.2)%,P<0.01]。比索洛尔预处理组细胞凋亡明显低于H/R组[(3.0±0.4)% vs(7.6±1.28)%,P<0.05)],给予PI3K/AKT特异性阻断剂LY294002后,与H/R+B组比较,H/R+B+LY组细胞凋亡明显上升[(5.3±2.3)%vs(3.0±0.4)%,P<0.05](图 1)。

图 1 H9c2心肌细胞凋亡水平 Figure 1 Representative images of flow cytometric analysis of H9c2 cardiomyocyte apoptosis. A: Control; B: Hypoxia/reoxygenation group (H/R); C: H/R+biosoprolol; D: H/R+biosoprolol+ LY294002.
2.4 各个分组细胞内活性氧水平检测

运用DCFH-DA 探针检测ROS 水平,结果显示(图 2),与对照组相比,缺氧/复氧处理后,细胞内ROS水平明显增多[(63.9±3.4)% vs(4.5±1.8)%,P<0.05)],而比索洛尔能显著降低H/R 刺激引起的ROS产生增多[(35.1±4.4)% vs(63.9±3.4)%,P<0.05]。

图 2 H9c2细胞内ROS水平 Figure 2 Representative images of DCFH flow cytometric analysis of intracellular ROS level in H9c2 cardiomyocytes in each group. A: Control; B: Hypoxia/reoxygenation (H/R) group; C: H/R+biosoprolol; D: H/R+biosoprolol+LY294002.
2.5 Western blotting检测p-AKT、p-GSK3β蛋白表达水平

Western 蛋白印迹结果显示(图 3AB):与control组相比,H/R 组p-AKT/GAPDH、p-GSK3β/GAPDH水平明显升高(P<0.05);经比索洛尔预处理的细胞组,p-AKT/GAPDH、p-GSK3β/GAPDH水平明显高于H/R组(P<0.05);而加入LY294002 组的p-AKT、p-GSK-3β蛋白水平明显低于比索洛尔预处理组(P<0.05)。

图 3 p-AKT和p-GSK3β检测情况和表 达水平 Figure 3 Expression of p-AKT (A) and p-GSK3β (B) in the cells detected by Western blotting. *P<0.05 vs H/R group; #P<0.05 vs. H/R+B group.
3 讨论

本实验证实比索洛尔对缺氧/复氧诱导的心肌细胞损伤具有明显保护作用,其作用机制与PI3K/AKT/GSK-3β信号通路的激活有关。

心肌缺血再灌注所造成的损伤目前仍然是临床上的一大难题,国内外不少学者目前致力于研究减轻心肌缺血再灌注损伤[12]。大量研究发现缺血预适应、药物预适应是强有效的心肌保护方式,尤其是药物预适应,能激发体内内源性的防御体系,增强机体耐受缺血再灌注能力、缩小心肌损伤面积、提高预后,具有广泛的研究前景。PAMI、PAMI-2 和Sent PAMI研究显示,急诊PCI术前使用静脉β受体阻滞剂,术中并发症显著减少,病死率和主要心血管事件显著降低,但其机制尚不清楚[8, 13]。大鼠实验表明β1受体阻滞剂能够减轻急性心肌梗死瘢痕区、边缘区和非梗死区的凋亡心肌细胞,其作用机制与大鼠机体体液调节的负性变时和负性变力作用密切相关。小鼠离体心脏实验,β肾上腺素(异丙肾上腺素)能刺激缺血/再灌注所诱导的心肌细胞凋亡,而β1受体拮抗剂(美托洛尔)能明显抑制异丙肾上腺素和缺血再灌注所导致的细胞凋亡[14]。临床和动物实验表明,心肌缺血过程中β受体阻滞剂可以通过阻断cAMP依赖的PKA途径,清除自由基、减少脂质的氧化,从而保护细胞膜磷脂分子的完整性[15],但是其具体机制目前不完全清楚。比索洛尔是一种高度特异性的β1受体阻滞剂,具有良好的降压疗效和心血管保护作用,能明显改善心血管病患者的临床转归[16-17],通过本实验研究,我们发现比索洛尔具有抗心肌细胞缺氧复氧损伤的作用。

细胞凋亡是心肌缺血/再灌注损伤后的主要死亡形式之一。本实验通过运用MTT法检测细胞活力,根据测得的吸光度值(OD值),来判断活细胞数量,OD值越大,细胞活性越强。观察到H/R组OD值较control组明显下降,说明该组细胞活性低,比索洛尔预处理组OD值较H/R组明显提升,加入特异性抑制剂LY294002后OD值较比索洛尔预处理组明显降低,说明比索洛尔提高缺氧/复氧心肌细胞的活力的作用部分被LY294002抵消。Annexin V/PI细胞凋亡检测结果显示,比索洛尔预处理组细胞凋亡率较缺氧复氧组明显下降;而LY294002组与缺氧复氧组凋亡率无明显差异,说明比索洛尔预处理确实减轻缺氧复氧诱导的H9c2心肌细胞的凋亡,与MTT结果一致。

心肌缺血再灌注过程是一个氧化应激过程,大量的活性氧通过多个途径爆发产生,加之内源性的自由基清除系统功能障碍,造成活性氧在体内聚集[18-19]。活性氧的聚集会对心肌细胞造成机构损伤和功能障碍,引起细胞内蛋白质变性降解、功能丧失,细胞色素氧化酶系统传递的电子明显减少,导致能量代谢障碍。本实验中发现,H9c2心肌细胞经历缺氧/复氧后,细胞内ROS水平明显升高,而比索洛尔预处理组ROS水平显著降低,说明比索洛尔能够减少缺氧/复氧过程中H9c2心肌细胞内ROS的产生,维持其细胞内氧自由基的水平,减轻细胞损伤。

当心肌发生缺血再灌注损伤时,体内的一些激酶被激活,而发生保护作用,称为再灌注挽救激酶(RISK),磷脂酰肌醇-3-激酶(PI3K)/蛋白激酶B(protein kinaseB,PKB/AKT)信号通路是其中重要的信号通路之一。PI3K 是磷脂酰肌醇的肌醇环上第3 位点碳原子磷酸化形成,是细胞内转导信号的重要分子之一。PI3K激活后与AKT发生相互作用,磷酸化AKT具有促细胞生存、抗心肌细胞调亡的作用。糖原合成酶激酶-3(GSK3β)磷酸化后,生物活性显著降低,即磷酸化的是非活性状态,减少线粒体通透性转换孔的开放,发挥保护心肌功能。多项实验包括动物体内、体外的实验己经证实缺血预适应、药物预处理可通过激活PI3K/AKT/GSK3β信号途径,在缺血再灌注损伤和缺氧复氧损伤过程中发挥重要作用,表现为减少心肌梗死范围、改善心脏收缩舒张功能、抑制细胞凋亡。本实验表明,H/R组与Control组相比,p-AKT/GAPDH、p-p-GSK3β/GAPDH比值增大,说明AKT、GSK3β蛋白磷酸化水平增高,这与缺氧复氧所引起的RISK途径反应性激活有关;比索洛尔预处理组与H/R 组相比,p-AKT/GAPDH、p-GSK3β/GAPDH比值显著提高,说明这两种蛋白磷酸化水平明显提高,而加入LY294002后AKT和磷酸化水平显著减少,差异具有显著意义(P<0.05)。该结果与文献报道的一致,说明比索洛尔预处理能够减轻缺氧复氧诱导的H9c2 心肌细胞的损伤,该作用的发挥与PI3K/AKT/p-GSK3β信号通路激活密切相关。

本实验通过H9c2心肌细胞系建立缺氧/复氧模型,模拟缺血再灌注损伤,研究比索洛尔的缺血再灌注损伤的保护作用,存在在体与离体之间的差异,但是通过培养H9c2 心肌细胞系,运用PI3K/AKT 特异性阻滞剂LY294002 已表明比索洛尔能够激活PI3K/AKT/p-GSK3β信号通路的表达,促进AKT、GSK3β的磷酸化,发挥抗心肌细胞缺氧复氧损伤的保护作用,这为临床上减轻心肌缺血再灌注提供了实验室基础。

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