2. 广东省中医院麻醉科,广东 广州 510120
2. Department of Anesthesia, Second Affiliated Hospital, Guangzhou Medical University, Guangzhou 510260, China
细胞缝隙连接(gap junction, GJ)是细胞之间的一种蛋白质连接通道,广泛存在于各种实质性脏器(如中枢神经,心脏,肝脏,肾脏,皮肤,肌肉等)组织中。GJ由特殊的通道蛋白-连接蛋白(connexin, Cx)组成。6个Cx环绕在一起组成一个“半通道”。两个位于各自细胞胞膜上的“半通道”对接在一起形成GJ。GJ沟通相邻细胞的胞浆,是细胞之间信号传递的一种重要方式[1-2]。研究发现,神经元以及胶质细胞间由不同Cx组成的GJ参与协调神经系统多种重要生理活动[3]。研究还显示脊髓细胞间由Cx43组成的GJ在慢性神经性疼痛中发挥重要的作用[4]。但在急性切口痛大鼠,细胞缝隙连接蛋白的变化和对急性疼痛的作用仍不清楚。本研究拟在急性切口痛大鼠模型上,通过疼痛行为学测量和免疫组化等方法观察脊髓背角缝隙连接蛋白Cx43的表达变化。
1 材料及方法 1.1 实验动物与分组选取8~10周龄雄性SD大鼠40只,体质量180~250 g,清洁级,由广东省实验动物中心提供。适应环境1周,室温20~25 ℃,湿度60%~70%,分笼饲养,通风良好,自由摄食、饮水。采用随机数字表法,将大鼠随机分为2组,对照组(C组):不作任何处理;手术组(P组):静脉注射生理盐水后行左后足切开手术。
1.2 切口痛模型的建立大鼠予1%异氟烷持续吸入麻醉下,常规消毒大鼠左后足,参照文献[5]方法,从足底近端0.5 cm处向足趾部作一长约1 cm的切口,切开皮肤后,用眼科镊挑起足底肌肉并行纵向切割,保持肌肉起止及附着完整。棉球按压止血后用细丝线缝合皮肤两针,用碘伏消毒切口后将大鼠置于安静、温暖、避强光的环境中。
1.3 机械痛阈的测定各组随机选取大鼠6只,参照文献方法[6],分别于术前及术后1、2、4、24 h采用von frey细丝(Stoelting测痛包58011,美国)测定各组大鼠的机械痛阈。将大鼠置于底为8 mm×8 mm金属筛网的玻璃箱中,以不同折力的von frey细丝刺激大鼠左足底切口周围,出现抬脚为阳性反应。测定首先从中等折力(4.56 g)开始,当该力度刺激不能引起阳性反应时,则给予相邻大一级折力刺激,如出现阳性反应,则给予相邻小一级折力刺激,如此反复进行,直至出现第1次阳性和阴性(或阴性和阳性)反应的跨度,再向下连续测定4次。不同刺激之间相隔30 s,以消除前一刺激的影响。阳性反应记为“×”,阴性反应记为“O”。50%缩足阈值采用下列公式计算:50%缩足阈值(g)=10Xf+kδ。
1.4 Western blot检测Cx43在脊髓背角的表达分别取正常对照组和切口痛模型组大鼠左侧背角,加适量细胞裂解液裂解细胞,收取蛋白,然后进行标准蛋白定量(Bio-rad DC assay);制备10% SDS-PAGE凝胶;将需检测蛋白标本上样,电泳,转膜,封闭,孵抗体,其中各抗体稀释度依次为:一抗(抗Cx43单克隆抗体,1 :6000),二抗(1:3000)。内参取β-actin(1:8000)一抗孵育后,二抗(1:10 000)。ECL发光试剂盒暗室发光、显影、定影。Bio-Rad凝胶成像系统采集图像,用Bio Imaging system(Gene Genius)对图像进行灰度扫描分析。
1.5 免疫荧光检测Cx43在脊髓背角的表达术前和术后1、2、4、24 h分别取大鼠各3只,用10%水合氯醛腹腔注射麻醉后,开胸暴露心脏,插管至主动脉起始端,剪开右心耳,快速注入4 ℃ PBS溶液进行心脏灌洗冲净血液,后接入4%多聚甲醛至大鼠四肢强直,迅速取大鼠脊髓L4-L5节段左侧背侧组织,4 ℃固定,30%蔗糖浸泡过夜。用Leica CM1900恒冷箱切片机对脊髓作连续切片,切片用TBS漂洗后立即进行免疫荧光化学染色。贴于玻片上,浸入含0.75%triton的PBS溶液1 h,然后加入10%胎牛血清封闭液室温封闭,小鼠抗Cx43(sigma, 1:600)37 ℃孵育2 h;FITC标记的山羊抗小鼠IgG(1:100)孵育1 h,PBS漂洗3次,滴加20 μg/ml DAPI复染。切片贴至载玻片上,抗荧光衰减封片剂封片,荧光显微镜下观察并拍摄图像。结果采用Image-Pro Plus 6.0图像分析软件对图像进行分析,所有图像在同一放大倍数(400倍)下进行,计算阳性细胞数量。
1.6 统计学处理采用SPSS13.0统计软件分析,计量资料以均数+标准差表示。机械痛阈采用非参数检验,组间比较采用Kruskal-Wallis法。免疫荧光及Western blot结果组间比较采用成组t检验,P < 0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 切口痛大鼠机械性痛阈的改变P组的术前机械性痛阈值与C组相比差异无统计学意义(P>0.05);P组术后1、2、4、24 h机械痛阈较C组均明显下降,且差异有统计学意义(P < 0.01,表 1)。
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表 1 各组大鼠手术前后不同时间点的50%机械回缩阈值比较 Table 1 Comparison of 50% paw withdrawal threshold in rats at different time points (g, Mean±SD) |
以β-actin的灰度值作为内参照,对各组条带的灰度值进行统计分析。结果显示:与C组比较,P组大鼠脊髓背角缝隙连接蛋白Cx43的表达于术后2 h、4 h明显增多,2 h和4 h组蛋白表达分别增加了(110±12)%和(89±7)%,差异具有统计学意义(P < 0.01,图 1)。
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图 1 切口痛对大鼠脊髓背角缝隙连接蛋白Cx43表达的影响 Figure 1 Effect of incision surgery on Cx43 expression in rat spinal cord dorsal horn assayed by Western blotting. Compared with control, **P < 0.01. n=4. |
C组各时间点的Cx43蛋白表达阳性细胞数比较差异无统计学意义(P>0.05)。P组于术后1、2、4、24 h检测Cx43蛋白表达阳性细胞数均明显增加,与C组比较,差异有统计学意义(P < 0.01),但组间差异无统计学意义(P>0.05,表 2)。
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表 2 各组大鼠左侧脊髓背角Cx43蛋白表达阳性细胞比较 Table 2 Numbers of cells expressing connexin 43 in rat spinal cord dorsal horn (%, Mena±SD) |
在哺乳类动物,至今已发现组成GJ的Cx蛋白至少有21种。依据Cx蛋白的相对分子质量大小命名,如:相对分子质量为43 000的Cx命名为Cx43,相应相对分子质量为32 000和26 000的Cx则命名为Cx32和Cx26 [7]。研究证明,Cx表达的异常与许多疾病的发生、发展有密切的关系。神经系统表达最丰富的是Cx43 [8-9]。他人研究结果证明,神经损伤能够导致背根神经节中Cx43表达增多,胶质细胞与神经元之间的GJ功能增强[10]。大量研究还证明脊髓GJ功能的改变与慢性疼痛的发生有着密切的关系[11]。GJ抑制剂能够显著降低三叉神经病理性疼痛大鼠的脊髓背角感觉神经元的敏化从而减轻大鼠的机械性痛觉过敏[12]。但Cx组成的GJ在急性疼痛中的表达和作用在我们研究之前未见报道。
手术后伤口疼痛是一种普遍存在而且感觉很敏锐的疼痛,手术后疼痛被证明能够影响患者的伤口愈合,而减轻手术后急性疼痛对促进患者临床恢复缩短住院时间具有重要的意义[13]。本研究采用的大鼠切口痛模型是Brennan于1996年提出[5]。在大鼠后足底经皮肤、筋膜和肌肉作一纵行切口,von Frey丝以递增的强度刺激足底损伤处,记录PWT值。大鼠于手术后表现出自发性痛、触诱发痛和痛觉过敏,与临床术后疼痛相似。本研究中大鼠行足底切开后,切口周围皮肤充血、肿胀,表现出不同程度的舔足或抬足行为,切口痛大鼠足底痛阈在术后24 h明显降低,且在2 h,4 h表现最为显著,说明痛觉过敏在2~4 h内达到高峰。
针对急性切口痛的研究显示,急性切口痛的产生与脊髓多种兴奋性氨基酸受体和神经递质有密切关系。除此之外,近来的研究还显示COX受体中的COX-1受体可能在切口痛中发挥作用,而应用特异性的COX-1受体抑制剂能够明显减弱急性切口疼痛[14];最近Reichl等还发现,鞘内给予针对抑制性神经递质GABA的受体激动剂能够减轻急性切口痛引起的机械性痛敏[15]。这些都提示我们急性切口痛的产生机制极其复杂。至今为止,针对胶质细胞在疼痛中作用的研究越来越多,胶质细胞被认为在疼痛的发生和维持阶段具有重要作用[16]。我们的研究证实在正常大鼠脊髓背角中存在丰富的Cx43表达,并且我们首次证实在急性切口痛大鼠模型中,脊髓背角Cx43蛋白的表达明显增多,与对照组相比,Cx43的免疫荧光强度明显增高,而以2 h,4 h为最显著。这些结果提示我们Cx组成的GJ可能在急性疼痛的发生过程中扮演重要角色。
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